Стерилизация резиновых перчаток и других резиновых предметов

М.В. Плахотин,

Профессор

СПРАВОЧНИК

ПО ВЕТЕРИНАРНОЙ ХИРУРГИИ

МОСКВА «КОЛОС» 1997

636,09

П37

УДК 619:617(031)

Плахотин М.В.

П37 Справочник по ветеринарной хирургии. М., «Колос», 1997

256 с. с ил.

 

В справочник включены сведения по подготовке рук, инструментов и животных к хирургическим операциям, по обезболиванию, обездвиживанию и наркозу животных. Описаны приемы остановки кровотечений, обработки ран, выполнения новокаиновой блокады, кастрации, обезроживания, кесарева сечения. Особое внимание было уделено профилактике и лечению хирургических болезней. Приведены рецепты наиболее часто употребляемых в хирургии лекарственных средств.

Рассчитан на ветеринарных врачей и фельдшеров.

 

 

639,09

 

 

(с) Издательство «Колос», 1977

ВВЕДЕНИЕ

Ведение социалистического животноводства на промышленной основе при вы­сокой концентрации, отраслевой специализации животных, внедрении индустри­альных методов в сельскохозяйственное производство ставит перед ветеринари­ей принципиально новые задачи. При решении их особое значение приобретает принцип единства профилактики и лечения при ведущей роли профилактики.

Ветеринарным врачам колхозов, совхозов и крупных животноводческих ком­плексов приходится повседневно осуществлять систему противоэпизоотических, профилактических и лечебных мероприятий и, кроме того, участвовать в реше­нии производственных, экономических и других вопросов. При такой сложной и многообразной работе ветеринарные врачи и ветеринарные техники нуждаются в справочной литературе по теории и практике ветеринарных мероприятий и тех­нологии их проведения, в частности при хирургической патологии, глазных болез­нях, ортопедии и андрологии (профилактика и лечение болезней мужских поло­вых органов). Это тем более необходимо потому, что по незаразным болезням животных нет четко разработанных и утвержденных законоположений, касаю­щихся методов и технологии проведения лечебно-профилактических мероприятий, а также не определены преемственность и объем их в условиях животноводчес­ких комплексов, ферм и ветлечебных учреждений района.

Необходимость издания справочника по важнейшим вопросам ветеринарной хирургии диктуется еще и тем, что разработанные ветеринарной хирургией меры профилактики травматизма и хирургической инфекции, рациональные методы эти­ологической, патогенетической терапии, оперативные способы лечения широко применяются в ветеринарной практике не только при травматизме, хирургической инфекции, андрологии, болезнях глаз и конечностей, но и при внутренних незаразных, гинекологических, инфекционных, некоторых инвазионных болезнях, за­болеваниях молодняка, особенно при комплексной диспансеризации и противо­эпизоотических мероприятиях. К таким широко применяемым в ветеринарии хи­рургическим приемам и методам относятся прежде всего методы асептики и ан­тисептики, способы временного обездвиживания; различные виды новокаиновых блокад, внутрикожные, подкожные, внутритрахеальные, внутривенные, внутри-артериальные, внутриаортальные пункции и инъекции; диагностическая гарпунизация печени и лимфатических узлов; биопсия костного мозга; прокол рубца; удаление инородных предметов из пищевода и желудочно-кишечного тракта; руменотомия; кесарево сечение; способы обеспложивания животных; предупреждение роста рогов; операции на сосках вымени и многое другое.

До настоящего времени по этими вопросам ветеринарной хирургии отсутст­вует справочная литература. Изданный в I960 году Сельхозгизом Рецептурный справочник по ветеринарной хирургии, переработанный нами после смерти Б. М. Оливкова, был реализован в короткое время.

К нам неоднократно обращались практические ветеринарные врачи и студен­ты-заочники ветеринарных факультетов и курсов усовершенствования ветврачей с просьбой написать справочник по ветеринарной хирургии и рецептуре. Идя на­встречу этим пожеланиям и практической необходимости, мы взяли на себя труд подготовить к печати справочник по наиболее актуальным вопросам ветеринар­ной хирургии и рецептуре.

При подготовке справочника мы опирались на огромный опыт бывших про­фессоров кафедры общей и частной хирургии МВА: заслуженного деятеля науки РСФСР лауреата Государственной премии Б. М. Оливкова, Ю. Н. Давыдова, И. Д. Медведева, многих доцентов и ассистентов, работавших и работающих в хирургической клинике МВД, а также на личный 47-летний клинический опыт; мы учитывали достижения отечественной и зарубежной науки и передовой опыт ветеринарных врачей по проведению лечебно-профилактических мероприятий в условиях современных животноводческих хозяйств, в ветеринарных лечебных уч­реждениях, на Центральном московском ипподроме, в конно-спортивных обще­ствах и Московском зоопарке.

В справочник вошли данные, как правило, проверенные и апробированные в условиях клиники МВА или животноводческих хозяйствах. Исходя из особенно­стей травматизма и заболеваний спортивных лошадей, мы сочли целесообразным в известной степени выделить в специальный раздел рецептуру по профилактике и лечению хирургической патологии у таких животных.

При составлении справочника использовано 485 литературных источников оте­чественных и 127 иностранных авторов. К сожалению, не представилось возмож­ности привести их в приложении в связи с ограниченностью листажа.

Автор выражает сердечную признательность и благодарность всем сотрудни­кам кафедры общей и частной хирургии, ортопедии и офтальмологии МВА за помощь при подготовке рукописи к печати, другим лицам, любезно предоставив­шим материалы для включения в нее.

Автор заранее благодарит всех коллег, критические замечания и советы кото­рых будут способствовать улучшению справочника при его переиздании.

ПРОФИЛАКТИКА ИНФЕКЦИИ

При проведении лечебно-профилактических и противоэпизоотических меро­приятий нужно строго выполнять правила асептики и антисептики, не допускать повреждения и функциональных нарушений кожи и слизистых оболочек, осущест­влять специальные меры по обеспложиванию внешней среды от патогенных мик­робов и вирусов. Нарушение или невыполнение хотя бы одного из звеньев асеп­тики и антисептики может привести к возникновению хирургической или специ­фической инфекции. Поэтому практические ветеринарные работники должны тщательно следить за чистотой рук, защищать их от загрязнения микробами, обеспложивать при случайном инфицировании и особенно перед проведением операции или специальной микробиологической работы.

Для этих целей применяют: йодированный 70%-ный спирт 1: 1000; раствор диоцида 1: 3000; нашатырный спирт для приготовления 0,5%-ного раствора, упо­требляемого для обработки рук и операционного поля; 5%-ный спиртовой раст­вор формалина, применяемый для обеспложивания операционного поля; 2%-ный раствор углекислой соды или 0,25%-ный раствор едкого натра для стерилизации инструментов; 3%-ный раствор перекиси водорода (в темной, плотно закупорен­ной посуде); растворы риванола 1:1000 и фурацилина 1:5000; 2%-ный хлорацид или хлорамин (последние два раствора хранят в склянках с притертой пробкой); 5%-ный раствор калия перманганата; 2%-ный спиртовой раствор брил­лиантовой зелени, а также сульфаниламиды и антибиотики. Однако частое мытье и обработка рук антисептическими средствами приводит к перерождению и даже заболеванию кожи. Учитывая это, необходимо не только уметь правильно обес­пложивать руки, но и профилактировать заболевание их. Для этого применяют средства по уходу за кожей рук.

1. Rp.: Glycerini

Spiritus aethylici

Liquori ammonii caustici

Aquae destillatae aa 25,0

M. D. S. Для смягчения кожи рук

(жидкость С. С. Гирголава).

 

2. Rp.: Ol. Ricini 5,0

Glycerini 20,0

Spiritus vini 95°—75,0

M. D. S. Для смягчения рук (жид-

­кость Тушнова). 3. Rp.: Natrii bisulfurost 3% —

200,0 D. S. Для удаления с кожи пятен калия перманганата.

4. Rp.: Liquoris ammonii caustici 4,0

Sol. hydrogenii peroxidati 3% — 200,0 D. S. Для удаления с кожи плот­но приставшей грязи, вы­сохшей крови.

 

ПОДГОТОВКА РУК И ОПЕРАЦИОННОГО ПОЛЯ

Перед обеспложиванием рук антисептическими растворами коротко обреза­ют ногти и запиливают их так, чтобы не было острых краев. Затем руки тщатель­но моют (не менее 5 минут) теплой проточной водой с мылом или 0,5%-ным ра­створом нашатырного спирта стерильными щетками (прокипяченными в воде в течение 15—20 минут). Особенно тщательно обрабатывают подногтевые простран­ства, межпальцевые и ладонные поверхности кистей.

Вымытые руки осушают стерильным полотенцем или стерильными марлевы­ми салфетками и в течение трех минут протирают стерильной ватой, смоченной 70°-ным этиловым спиртом или йодированным спиртом 1:1000.

Операционное поле готовят так: выбривают шерсть, кожу моют с мылом, осушают и так же, как и руки, протирают стерильной ватой, смоченной 70°-ным спиртом, двукратно смазывают кожу 5%-ным спиртовым раствором йода, фор­малина (см. рец. 11) или перманганата калия (см. рец. 12).

 

5. Rp.: Chloramini 50,0

Liquoris ammonii caustid 25,0

Aquae destillatae 5000,0

 

М. D. S. Для обеспложива­ния рук и операционного поля (Б. М. Оливков),

 

Хорошим моющим и бактерицидным свойством обладают растворы диоцида; в разведении 1: 5000 они не вызывают раздражения кожи рук, создают асептич-ность не менее чем на 2 часа. Более концентрированные растворы вызывают су­хость кожи и раздражение. Если руки загрязнены гнойными выделениями, при­меняют раствор в концентрации 1:2500.

6. Rp.: Sol. diocidi 1: 3000 (l: 5000)

D. S. Протереть руки смоченной стерильной салфеткой в те­чение 3 минут, затем 1—2 минуты, смоченной 96⁰-ньм этиловым спиртом (Е. Л. Кочергина).

 

 

Хорошими антисептическими свойствами обладают растворы дегмина и дегмицида. Это слегка опалесцирующие жидкости, устойчивые при хранении; обла­дают бактерицидными свойствами как в отношении грамположительных, так и грамотрицательных бактерий. При их применении руки предварительно моют с мылом без щетки в течение 2—3 минут, тщательно ополаскивают и в течение 3 минут дважды протирают тампонами (губками), смоченными этими раствора­ми. Так же обрабатывают и операционное поле.

7. Rp.: Degmini 10,0

Aquae destillatae (font.)

1000,0

M. D. S. Для обработки рук и операционного поля.

 

8. Rp.: Degmicidi 33,0

Aquae destillatae (fontani) 1000,0

M. D. S. Для обработки рук и операционного поля

При обработке рук церигелем его в количестве 3—4 г наносят на сухие, практически чистые руки и в течение 8—10 секунд тщательно растирают, что­бы покрыть всю ладонную, тыльную поверхности, межпальцевые промежутки и нижнюю треть предплечья. Затем высушивают руки на воздухе или под венти­лятором в течение 2—3 минут, во время сушки пальцы не должны соприкасаться и быть чуть согнутыми, чтобы образовавшаяся пленка не соскользнула, время сушки сокращать нельзя. Если в процессе работы пленка с отдельных участков рук соскользнет, инфицирования раны не происходит, так как руки остаются сте­рильными. Пленку снимают спиртом. Раздражения кожи и общетоксических яв­лений не наблюдается.

9. Rp: Cerigeli 400,0

Для антисептической под-

готовки рук перед опера­цией.

 

 

 

 

Помимо указанных, применяют и другие средства.

10. Rp Rp.: Spiritus aethylici

Aetheris aethylici aa 100,0

D. S. Для протирания выбритой

кожи и подготовки опера­-

ционного поля к трансплантации

кожи.

 

11. Rp.: Formalini 10,0

Spiritus aethylici 96⁰ — 200,0

Eosini 0,1

М. D. S. Для 1—2-кратного сма­ зывания кожи, свободной от шерсти (волоса) (для обеспложивания тонкой ко­жи в области усиленного потоотделения).

 

12. Rp.: Sol. Kalii permanganatis

5% -500,0

D. S. Для 3-кратного смазыва­ния

кожи (при дерматите).

 

Одним из высокоактивных средств в отношении кишечной палочки, золотис­того стафилококка, протея, синегнойной палочки считают и йодонат. Он облада­ет фунгицидными свойствами, вызывает гибель спор. Концентрат йодоната хра­нят в посуде из темного стекла. Его разводят дистиллированной водой 1:3 пе­ред употреблением.

13. Rp.: Jodonati 10,0

Aquae destillatae sterilis30,0

M. f. solutio ex temporae.

D. S. Для двукратного смазыва­ния кожи операционного поля.

 

14. Rp.: Acidi lactici 100,0

Aquae destillatae 1000,0

 

M. D. S. Для антисептизации влагалища. Употреблять в теплом виде.

 

15. Rp.: Sol. Hydrargyri oxycyanati

1% - 400,0

Acidi lactici 1,0

M. D. S. Для орошения влагали­ща перед операцией.

МЕСТНОЕ ОБЕЗБОЛИВАНИЕ

ОСТАНОВКА КРОВОТЕЧЕНИЯ.

Для остановки кровотечения используют средства местного действия, повы­шающие свертываемость крови и суживающие просвет сосудов, а также средства общего действия, влияющие на свертывающую систему.

Установлено, что в крови высокоорганизованных животных имеются две сис­темы, обеспечивающие адаптационную реактивность крови как в условиях кровотока, так и кровотечения. Свертывающая система крови способствует гемо­стазу, а противосвертывающая — предупреждает образование тромбов внутри сосудов.

Функционирование этих систем обеспечивают нейрогуморальные механизмы регуляции. На механизмы регуляции свертывающей и противосвертывающей сис­тем влияют различные физиологические и патологические процессы, вследствие чего активируется либо свертывающая, либо противосвертывающая системы крови. Важнейшим звеном такой регуляции является система гипофиз — надпочечни­ки. Большую роль играют нейрохимические механизмы, включающие взаимодей­ствие таких биологически активных веществ, как адреналин, гистамин, серотонин, гиалуронидаза и другие с нейтральными хемореактивными структурами централь­ной нервной системы, и прежде всего гипоталамуса. Высшая же и наиболее точ­ная регуляция этих систем осуществляется корой головного мозга через вегета­тивную нервную систему.

Согласно общепринятой теории А. Шмидта, свертывание крови протекает в 3 фазы. Первая фаза характеризуется образованием тромбопластина из неактив­ных его предшественников в присутствии ионов кальция; вторая фаза отличает­ся превращением протромбина в тромбин под влиянием тромбопластина в при­сутствии ионов кальция и витамина К; третья фаза сводится к превращению фиб­риногена под влиянием тромбина в фибрин.

В возникновении или невозникновении свертывания крови большая роль от­водится сосудистой стенке, в которой содержится сложный комплекс тканевых факторов коагулянтного (тромбопластин, гиалуроновая кислота) и антикоагулянт-ного действия (гепарин и др.). Инициатором свертывания крови является актив­ный фактор Хагемана и тканевой тромбопластин. При их появлении в кровяном русле, кровь начинает свертываться, в ней образуется тромб. Насыщенные жир­ные кислоты, адреналин и другие «физиологические агенты» активируют фактор Хагемана. Что же касается тканевого тромбопластина, то он может проникать из тканей в кровоток. Однако, несмотря на активацию фактора Хагемана и про­никновение в кровь тканевого тромбопластина, свертывания крови не происходит, если не нарушена целостность интимы и в стенках кровеносных сосудов нет пато­логических изменений. В таких условиях активация фактора Хагемана и поступ­ление в кровь тканевого тромбопластина нейтрализуется рефлекторным выделе­нием в кровь антикоагулянтов — гепарина и гепариноподобных веществ, активи­рующих фибринолитические процессы. При этом поступающий в кровоток гепарин образует с тромбином, фибриногеном и антиплазмином комплексные соединения, которые обладают антикоагулянтной активностью и литическим действием на фибрин.

При патологических же состояниях, сопровождающихся дезорганизацией и деструкцией основного вещества соединительной ткани происходит накопление в тканях и стенке кровеносных сосудов гиалуроновой кислоты и других продуктов деструкции соединительной ткани. В результате чего в зоне травмы или патологи­чески измененной стенки кровеносного сосуда значительно активизируется фактор Хагемана, накапливается тканевый тромбопластин, гиалуроновая кислота и в кро­ви развертывается тромбопластический процесс, приводящий к появлению тромба и развитию тромбофлебита.

Активизируя коагулянтную или антикоагулянтную системы, можно ускорять или предупреждать образование тромбов в кровеносных сосудах. В качестве ак­тиваторов коагулянтной системы применяют протамины, эпсилонамино-капроновую кислоту (ЭАКК), парааминометилбензойную кислоту (ПАМБА), аминоме-тилциклогексанкарбоновую кислоту (АМСНА). Кроме того, используют ингиби­торы фибринолиза, получаемые из ткани поджелудочной железы (инипрол, пант-рипин, ингибитор трипсина Кунитца), околоушной железы (тросилол), легких (пульмин, контрикал, ингитрил) и мочи (мингин). Из других средств, активирую­щих свертывание крови, применяют кальция хлорид, витамин К, гиалуронидазу и гиалуроновую кислоту.

Протамины, относящиеся к простым основным протеинам клеточного ядра, подавляют действие антикоагулянтов. Введенный внутривенно протамин удаляет-

ся из крови в первые минуты после инъекции, однако вызванное им подавление антикоагулянтов сохраняется дольше, чем присутствие его в крови.

Для повышения свертываемости крови чаще применяют протамин-сульфат как антагонист гепарина и активатор коагулянтной системы, реже — протамин-хлорид. Оба препарата в виде 1%-ного водного раствора вводят внутривенно мелким жи­вотным по 3—4 мл, крупным — по 20—30 мл по 1 разу в день. При необходимости его применяют повторно в той же дозе через 15 минут после первой инъекции.

При тяжелых кровотечениях, особенно обусловленных применением гепарина, инъецируют протамин-сульфат 3 раза в день в указанных дозах.

Необходимо иметь в виду, что протамины оказывают побочное действие. На­блюдается снижение кровяного давления, брадикардия, замедление легочного ды­хания, транзиторные лихорадки, снижение тромбоцитов и др. При внутримышеч­ных инъекциях возможны местные реакции. Большого опыта по применению про-таминов в ветеринарной практике нет, поэтому целесообразно накапливать факти­ческий материал по уточнению дозировок у животных разных видов.

В целях остановки кровотечения заслуживает применения и широкой провер­ки на животных различных видов аминокапроновая кислота (АКК), а также ее препараты, такие как ЭАКК, ПАМБА, АМСНА. Ее назначают внутрь и внутри­венно, она малотоксична, быстро (через 4 часа) выводится с мочой при нормаль­ном функционировании почек. Противопоказаниями к ее применению служит склонность к тромбозам и функциональные нарушения почек.

В качестве антикоагулянтов наиболее часто применяют гепарин, неодекумарин, цитрат натрия, фибринолизин и др.

ПЕРЕЛИВАНИЕ КРОВИ

При кровопотерях прежде всего останавливают кровотечение механическими приемами и средствами, повышающими свертываемость крови, а затем пополняют кровяное русло совместимой кровью или кровозаменяющими жидкостями. Для остановки кровотечения можно перелить консервированную несовместимую (гете­рогенную) кровь в малом объеме. Однако переливать кровь от другого животного (донора) возможно только после тщательно проведенных исследований, позво­ляющих исключить кровопаразитарные и другие инфекционные болезни. Поэтому для предоперационной подготовки и послеоперационного пополнения кровью опе­рированного животного целесообразно осуществлять обменную аутогемотрансфу-зию, при которой кровь берут от этого же животного.

ОБМЕННАЯ АУТОГЕМОТРАНСФУЗИЯ

С 1965 г. по предложению Б. В. Петровского в медицине широко применяют обменную аутогемотрансфузию, целесообразна она и в ветеринарии.

Известно, что переливание донорской, одногруппной крови приводит к су­щественным изменениям иммунологического статуса у реципиента. Что же касает­ся обменной аутогемотрансфузии, то она, практически не меняя иммунологическо­го равновесия организма, благотворно влияет на физиологическое состояние и, кроме того, стимулирует функцию кроветворных органов.

За 2—3 дня до операции берут кровь в соответственно подготовленный сте­рильный сосуд при строгом соблюдении правил асептики и антисептики. Предва­рительно в него наливают стерильный 5%-ный раствор натрия цитрата из расче­та 10 мл на 200 мл крови. В нашей клинике для этого используют 10%-ный сте­рильный кальция хлорид в таком же соотношении к крови.

Рис. 1. Фильтрация консервирован­ной крови перед трансфузией (ори­гинал).

При взятии крови струю направляют по стенке сосуда и легкими вращатель­ными движениями смешивают кровь с одним из указанных стабилизирующих растворов. С профилактической и лечебной целью во взятую кровь добавляют пенициллин (100 000 ЕД на 100 мл крови) с растворами норсульфазола или эта-зола (5 мл 2% на 100 мл крови) или мор-фоциклин (0,1 на 100 мл крови). Затем со­суд с кровью герметически закрывают и ста­вят в рефрижератор при температуре 2—4°. В каждый сосуд набирают по 500 мл крови. Всего у лошадей и коров (быков) берут 2— 3 л, у мелких животных (собаки, овцы) — по 100 мл (всего 200—300 мл) крови. За сутки до операции или в день операции кровь подогревают на водяной бане до тем­пературы тела, фильтруют, соблюдая пра­вила асептики и антисептики, через 6 слоев стерильной марли с помощью предложен­ного нами простого устройства (рис. 1) или через специальные мелкопористые филь­тры и медленно вливают в вену 72 или 7з объема первично взятой крови. Одновре­менно берут столько же крови в другой со­суд из другой вены, стабилизируют и поме­щают в рефрижератор. Оставшуюся кон­сервированную кровь вливают в вену после операции.

Через 2—3 дня после операции вливают вторично взятую кровь, соблюдая те же правила.

Аутогемотрансфузия показана также для Стимулирования физиологической систе­мы соединительной ткани, повышения эритробластической функции костного мозга и активизации регенеративных процессов. После аутогемотрансфузии в кровяном русле увеличивается количество юных форм эритроцитов и уменьшается количество старых форм. Мы рекомендуем в указанных целях делать не менее двух аутогемотрансфузии с недельным переры­вом между ними.

ГЕТЕРОГЕМОТРАНСФУЗИЯ

Переливание гетерогенной крови применяют для стимуляции иммунобиоло­гических и регенеративных процессов, а также для улучшения зритропоэза и ос­тановки кровотечения, Однако при гетерогемотрансфузии существует опасность развития сильного коллоидоклазического шока. Поэтому гетерогенную кровь переливают небольшими дозами, лучше капельным способом (по М. Д. Харченко) или после предварительного (за 30 минут) введения в кровь 0,5%-ного раствора новокаина из расчета 0,25 на 1 кг веса.

Р. П. Таросян рекомендует переливать гетерогенную кровь малыми дозами: лошадям и ослам — гетерогенную кровь крупного рогатого скота, а собакам — кровь коз. Кровь берут от здоровых животных, стабилизируют натрия цитратом либо кальция хлоридом и вводят в яремную вену. Дозы гетерогенной крови по Таросяну: коровам и лошадям от 0,05 до 0,1 на 1 кг веса, собакам 0,1—0,2 мл.

ЖИДКОСТЬ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ КРОВИ НА СОВМЕСТИМОСТЬ

171. Rp.: Natrii Chloridi purissiroi 0,85

Natrii citratis 1,0 Aquae destillatae 100,0

ЖИДКОСТИ ДЛЯ СТАБИЛИЗАЦИИ КРОВИ

М. f. solutio.

D. S. Для приготовления 5%-ной взвеси эритроцитов.

 

172.Rp.: Sol. Natrii citratis 5% -200,0 (300,0) D. S. По 10 мл на каждые 200 мл крови.

173. Rp.: Sol. Natrii citratis 5% -200,0

Sol. glucosae 25% — 220,0 M. D. S. По 10 мл на 90 мл крови.

174. Rp.: Sol. Calcii chloridi crys-tailisati 10% - 100,0 Sterilisetur! D.S. Лошади и крупному рога­тому скоту для консерви­рования переливаемой кро­ви без учета совместимос­ти в количестве 500— 1000 мл.

СРЕДСТВА, ПРЕДУПРЕЖДАЮЩИЕ ОБРАЗОВАНИЕ ФИБРИНА И ДЕЙСТВУЮЩИЕ НА НЕГО ФИБРИНОЛИТИЧЕСКИ

167. Rp.: Dicumarini 0,05 (0,1) Sacchari 0,5

М. f. pulvis

D. t. d. N 3 (5)

S. Собаке. По 1 порошку в день. При тромбофлеби­тах или перед операцией на кровеносных сосудах (контролировать индекс протромбина, не снижать ниже 30—40%). Лошади— на прием 0,5—0,8, коро­ве — 0,5—1,0.

188. Rp.: Heparini 500 ED

Aquae destillatae 10,0 M. f. sol. Sterilisetur! D. S. Для обмывания опери­руемых концов кровенос-

ных сосудов с целью пре­дупреждения образования в них тромбов.

189. Rp.: Heparini 30 000 (50 000) ED

Aquae destillatae 10,0 M. f. solutio. Sterilisetur! D. S. Лошади (корове). Для внутримышечного введе­ния перед операциями на сосудах или при лечении тромбофлебитов. Две инъ­екции в день с 4-часовым перерывом. При падении индекса протромбина до 30% или кровотечении вве­дение прекратить.

Значительным фибринолитическим действием обладает гирудин, содержащий­ся в слюне пиявок. Это высокомолекулярный полипептид. В противоположность гепарину действует исключительно как антитромбин и не вступает в связь ни с каким другим фактором свертывающей системы крови. На него не действует антагонист гепарина — протамин.

Гепарин, как мукополисахарид класса мукопротеин-полисернистых эстеров, имеет разные точки приложения в свертывающей системе крови. Он действует как антитромбин и как антипротромбин.

Присвежих асептических тромбофлебитах целесообразно использовать меди­цинские пиявки и подсаживать их в зоне тромбофлебита. Животных перед этим тщательно моют с мылом, затем выбривают зону подсадки и после удаления остатков мыла с помощью тампонов кожу смазывают сахарным сиропом и под­носят пиявок. Насосавшиеся крови пиявки отпадают. Свежие тромбы рассасыва­ются на 3-й и 5-й день после 1—2 повторных подсадок пиявок.

РАНЫ

Асептические операционные раны заживают по первичному натяжению, без нагноения обычно в течение семи дней, при условии тщательной остановки крово­течения, припудривании их бактериостатическими порошками, правильном нало­жении швов, обеспечении покоя, создании гигиенических условий содержания и полноценного кормления.

Случайные и огнестрельные раны заживают двуфазно, по вторичному натя­жению при более или менее выраженном нагноении.

Случайные и огнестрельные раны, как правило, загрязнены и содержат раз­личных микробов. Наиболее опасны раны, проникающие в полости и внутренние органы и раны крупных кровеносных сосудов. Резаные, колотые и особенно опе­рационные раны содержат меньше мертвых тканей, чем рубленые, рваные, ушиб­ленные и огнестрельные. Чем больше в ране мертвых тканей, тем скорее наступает перераздражение нервных центров, приводящее к нарушению трофической иннер­вации и развитию нейродистрофии, способствующей дальнейшему омертвению тканей в зоне раны и развитию раневой инфекции. Все это приводит к ухудше­нию общего состояния и утяжеляет течение раневой болезни.

На основе физико-химических данных, протекающих в ране, И. Г. Руфинов разделяет раневой процесс на фазу гидратации, или биологического очищения ра­ны, и фазу дегидратации, или регенеративно-восстановительных явлений.

 

Первая фаза (период после ранения) характеризуется нарастанием воспали­тельной реакции, гидратационных явлений и биофизико-химическими изменения­ми, сопровождающимися развитием местного ацидоза; изменением соотношений электролитов (увеличение К и уменьшение Са); повышением осмотического и он-котического давления, содержания гистамина, ацетилхолина и других физиологи­чески активных веществ; увеличением проницаемости капилляров, развитием гид­ратации (набухание) тканей; выраженным ферментолизом, фагоцитозом, актив­ной защитной реакцией физиологической системы соединительной ткани и многи­ми другими изменениями.

Все это направлено на локализацию зоны повреждения, борьбу с микробами и, главное, на биологическое очищение раны от мертвых тканей и инородных предметов. Мертвые ткани подвергаются ферментативному расщеплению под влиянием протеолитических, липолитических и других ферментов организма, про­дуктов жизнедеятельности микрофлоры раны и фагоцитоза, которые играют важ­ную роль в подавлении инфекции. В результате в ране накапливается гнойный экссудат, содержащий токсические продукты тканевого распада и жизнедеятель­ности микробов. Гной и мертвые ткани служат сильными раздражителями. Он выделяется во внешнюю среду и в значительном количестве всасывается в лим­фатические и венозные сосуды, что приводит к возникновению гнойно-резорбтив-ной лихорадки, характеризующейся повышением температуры тела, ухудшением функции всех систем и общего состояния животного. Чем больше в ране мертвых тканей и активнее происходит их расщепление ферментами организма и микро­флоры, тем больше образуется гноя, тем тяжелее протекает гнойно-резорбтивная лихорадка. Раневой процесс приобретает гиперергическое течение. В ранах про­грессируют некротические процессы, ухудшаются иммунобиологические и другие механизмы защиты, активизируется раневая инфекция, раневая болезнь приобре­тает тяжелое и затяжное течение.

При небольшом количестве мертвых тканей раневой процесс протекает нор-моргически при умеренном отеке, отсутствии дополнительного некроза тканей, небольшом скоплении гноя и слабовыраженной гнойно-резорбтивной лихорадке. Рана к 3—5-му дню частично очищается от мертвых тканей, и раневой процесс постепенно переходит во вторую фазу.

Вторая фаза раневого процесса, в отличие от первой, характеризуется сни­жением признаков воспаления, кислой реакции раневой среды, дегидрата­цией и преобладанием регенеративных процессов над некротическими. В этой фазе различают два периода. В первом периоде преобладает процесс гранулиро­вания, во втором — эпидермизации и рубцевания раны.

В первом периоде постепенно нормализуется трофика, снижаются местный ацидоз, активность ферментов, фагоцитарная реакция, осмотическое и онкотиче-ское давление, количество калия, гистамина, физиологически активных веществ, нормализуется крово- и лимфообращение, проницаемость капилляров, возникает и усиливается дегидратация (отбухание) тканей и рассасывание отека. Все это обе­спечивает благоприятные условия для роста, созревания грануляционной ткани и нарастания на созревшие ее слои покровного эпителия. По мере развития здоро­вых грануляций резко уменьшается количество и изменяется качество раневого экссудата. Он становится более густым и слизистым. В нем увеличивается коли­чество гистиоцитарных клеток и уменьшается количество лейкоцитов.

Здоровые грануляции — мелкозернистые, розовые, не кровоточат. Они служат биологическим барьером, препятствующим проникновению микробов в здоровые ткани и даже всасыванию токсических продуктов. Как только вся раневая по­верхность покроется здоровыми грануляциями, минует опасность развития ране­вой инфекции, нормализуется температура и улучшается общее состояние жи­вотного.

По мере заполнения ран грануляциями раневой процесс переходит во второй период, характеризующийся затуханием воспалительной реакции, снижением аци­доза до нейтральной реакции раневой среды и постепенной ее нормализации до рН 7,3—7,4. В грануляционной ткани усиливаются явления дегидратации, в ре­зультате чего она созревает. Ее коллагеновые и эластические волокна уплотняют­ся и укорачиваются. На созревшие нормальные грануляции нарастает эпители­альный покров, Зона его роста представлена беловато-перламутровой каймой

шириною от 2 до 5 мм. Грануляционный слой, покрытый эпителием, продолжает дегидратироваться под влиянием сдвига рН среды в щелочную сторону. Это при­водит к концентрическому рубцеванию (стягиванию) раны. В тех случаях, когда воспалительная реакция и ацидоз раневой среды удерживаются на достаточно высоком уровне, необходимой дегидритации не происходит, грануляции становят­ся гидремичными, ярко-красными, крупнозернистыми, легко кровоточивыми, на них не нарастает кожный эпителий. Этого не происходит и при перезрелых из­лишне дегидратированных — бледных, плотных рубцующихся грануляциях.

При нормальном течении раневого процесса второй период заканчивается полной эпителизацией раны. Формирование же и перестройка рубца продолжает­ся: периферические его части разрыхляются, а центральные — склерозируются. Рубец уменьшается, но становится более прочным и подвижным.

У лошадей и плотоядных биологическое очищение случайных и огнестрельных ран протекает по типу гнойно-ферментативного расплавления мертвых тканей с накоплением в них гнойного экссудата.

У рогатого скота и свиней очищение ран осуществляется преимущественно гнойно-секвестрационным путем. Сформировавшаяся фибрино-тканевая масса подвергается секвестрации. Наряду с этим происходит и ферментативное рас­плавление ее, но значительно слабее, чем у лошадей и плотоядных животных.

У грызунов и птиц биологическое очищение ран осуществляется по типу сек­вестрации. После ранения кровь довольно быстро свертывается и вместе с мерт­выми тканями превращается в фибрино-тканевую массу, а затем в фибрино-тка-вевой струп, прочно защищающий рану от загрязнения. Струп удерживается на ране до полной секвестрации. В зоне секвестрации разбиваются процессы грану­лирования и эпидермизации. Струп полностью отторгается после того, как рана заполнится грануляциями и покроется эпидермисом.

Итак, заживление ран у грызунов и птиц протекает обычно под струпом. Такой тип заживления можно наблюдать и у других животных преимущественно при кожных и неглубоких ранах с небольшой потерей тканей и малой зоной мерт­вых тканей.

Описанные биологические особенности заживления ран у разных видов жи­вотных необходимо учитывать при лечении случайных и огнестрельных ран.

Лечение асептических операционных ран сводится: к соблюдению асептики при проведении операций, остановке кровотечения, недопущению излишнего травмиро­вания и оставлению в ране размятых, размозженных и некротизированных тканей, правильному наложению, особенно кожных, швов и защитной антисептической повязки, предоставлению покоя и препятствию последующего загрязнения зоны раны.

Лечение случайных и огнестрельных ран. В первой фазе проводят комплекс­ное лечение. Предоставляют покой, улучшают содержание, кормление; останавли­вают кровотечение, возмещают потери крови; применяют новокаин-антибиотиковые блокады для охраны нервных центров от перераздражения и предупреждения яв­лений нейродистрофии в зоне раны. На этом фоне делают хирургическую обра­ботку в целях профилактики инфекции, очищения раны от загрязнений и мертвых тканей.

С последующим применением дренирования, антисептизации применяют средства, повышающие общую сопротивляемость организма и стимулирующие регенеративно-восстановительные процессы, рану ушивают или оставляют откры­той. Хирургическую обработку выполняют по типу рассечения, частичного и пол­ного иссечения раны. По времени эти виды хирургической обработки подразделя­ют: на первичную раннюю, выполняемую в первые 6—12 часов после ранения; первичную отсрочную делают в пределах 24—36 часов; первичную позднюю — по­сле этих сроков. Если первичная обработка раны была выполнена не достаточно совершенно, выполняют вторичную хирургическую обработку: раннюю, отсрочную или позднюю. Чем раньше и полноценнее сделана хирургическая обработка, тем совершеннее профилактируется раневая инфекция и другие осложнения.

Хирургической обработке предшествует механическая и антисептическая под­готовка окружности и самой раны: кожный покров и рану смазывают 5%-ным спиртовым раствором йода; удаляют видимые загрязнения, закрывают рану сте­рильной марлевой салфеткой; выстригают и выбривают шерстный покров (предуп­реждать попадание шерсти в рану); промывают рану перекисью водорода или 0,5%-ным раствором калия перманганата, 2%-ным раствором хлорамина либо фурацилина 1: 5000; тщательно осушают рану и кожный покров; делают новокаин-антибиотиковую инфильтрацию окружности раны, беспокойным животным допол­нительно инъецируют аминазин, ромпун (см. разделы «Наркоз» и «Местное обезбо­ливание»).

У птиц и грызунов хирургическую обработку производить нецел