Гусей и уток против вирусного энтерита

Страна, название вакцины	Характерис-тика вакцины	Вид птицы	Способы иммунизации, иммунитет
Франция, Пальмивакс	Вирус-вакцина	Мускус-ные утки   Гуси	Взрослым уткам вводят перед яйцекладкой, утятам, полученным от вакцинированных и невакцинированных уток, в 21-28-суточном возрасте 0.5 см3 подкожно в области шеи. Иммунитет - несколько месяцев. Утятам и гусятам в 21-28-суточном возрасте, полученным от невакцинированных несушек, можно вводить гипериммунную сыворотку подкожно по 0.3 и 2.0 см3 соответственно   Взрослым гусям вводят перед яйцекладкой. Гусятам - в 21-28-суточном возрасте. Вводят внутримышечно в области груди. Иммунитет продолжается несколько месяцев
Франция Бетапальмивакс	Инактивиро-ванная бетапропиолактоном	Гусята	Гусятам вакцину вводят в 30-90-суточном возрасте. Несушек вакцинируют перед яйцекладкой.
Дания	Вирусвак-цина	Гуси	Несушкам вакцину вводят за 70 и 40 суток до яйцекладки
Чехословакия	Инактивиро-ванная бетапропиолактоном сорбированная AL(OH)3 и консервированная формалином. Исходный материал -вирус штамм 34/74 SVU в гомогенате гусиных эмбрионов	Гусята	Вакцину вводят в 1- и 30-суточном возрасте. Индекс нейтрализации антител в сыворотке крови в 2-месячном возрасте – 3,12; в 4,5-месячном -2,77.
Китай	Вирусвакци-на из штамма MPV-P1	Утята	Вакцину вводят утятам мускусной породы в односуточном возрасте. Пик накопления антител на 21-30 сутки. Поствакцинальный эффект сохраняется до 190 суток
Украина	Вирусвакци-на из штамма BBS-99 с активностью выше 5,7 lg ТЦД50	Гуси	Вакцину вводят за 40 и 26 суток до периода яйцекладки. Трансовариальные антитела в 7-суточном возрасте (1:128) и 30-суточном (1:16) обеспечивают устойчивость к болезни.

 

При титрах антител в сыворотках крови вакцинированных гусят 3.4-4.7 log₂, сохранность молодняка после контрольного заражения эпизоотическим вирусом составляла 89-94%. Одновременно Иващенко В.Г. отмечал гибель у 42-88% неиммунных гусят, обладающих активностью сывороток в РНГА до 1:8 (см. рис 8.).

7 14 21 30 60 90 120 150 210 270 сутки

Рисунок 8. Уровни специфических антител в сыворотке крови гусят, выявляемые РНГА и РН при парвовирусном энтерите гусей и мускусных уток

Nady, J. Erdei, M. Kelemen (1997) была разработана масляная инактивированная вакцина против парвовируса гусей и мускусных уток (Deparphylin). Вируснейтрализующие титры после двукратной вакцинации до начала периода яйценоскости и преиммунизации маточного поголовья живой вакциной составляли 1:1000-1:5000. Это значение титра снижалось до 1:250-1:300 к концу периода яйцекладки, длящегося 4 месяца.

После введения гипериммунной сыворотки SPF-гусятам 1-суточного возраста с минимальным титром 1:40 они противостояли контрольному заражению вирулентным вирусом 10^3.0 LD₅₀ в 1- и 8-суточном возрасте. Уровень трансовариальных антител у гусят, полученных от несушек, вакцинированных препаратом Deparphylin, контролировали в начале, середине и конце периода яйцекладки. Контроль осуществляли в РН и методом контрольного заражения вирулентным вирусом в дозе 10^3.0 LD₅₀. Титры ВН у односуточных утят составляли 1:500, 1:100 и 1:80 в начале, середине и конце периода яйцекладки, соответственно, при полной защите против контрольного заражения. При этом не было необходимости защиты с помощью гипериммунных сывороток.

Контримавичус Л.И. и др. разработали технологию изготовления культуральной лиофилизированной вакцины из аттенуированного вируса штамма ЛИВ-22 ВИЭВ. Для производства вакцины использовали суспензию клеток фибробластов куриных эмбрионов.

Вакцину применяют с профилактической целью для иммунизации клинически здоровых птиц.

Гусят 1-30-суточного возраста прививают однократно внутримышечно (в область бедра) в объеме 0,5 мл, гусей – тем же методом в объеме по 1,0 мл двукратно с интервалом в 14 дней за 30-45 дней до начала каждой яйцекладки.

Гусят-бройлеров, полученных от вакцинированных гусынь, не прививают. Ремонтный молодняк гусей, полученный от иммунизированного стада птиц, прививают в возрасте 20-25 дней однократно в дозе 0,5 мл и за 30-45 дней до начала яйцекладки дважды с интервалом в 14 дней в дозе 1,0 мл.

Перед применением вакцину в сухой форме с титром 10⁴ ТЦД₅₀ и выше разводят с соблюдением правил асептики физиологическим раствором в соотношении 1:10, т.е. содержимое одного флакона (ампулы) 4-12 мл или 2 мл лиофилизированного вируса с наполнителем разводят 40-120 мл или (20 мл) стерильного физиологического раствора (рН 7.0-7.4) комнатной температуры. Вакцину с титром 10³ ТЦД₅₀ разводят в объеме, равном объему препарата до высушивания (2-12 мл).

Жидкую вакцину с титром 10⁴ ТЦД₅₀/мл и выше, расфасованную во флаконы по 100-200 мл, разводят физиологическим раствором в соотношении 1:10.

Место введения вакцины обрабатывают 70% спиртом. Вакцинированному молодняку рекомендуется введение в рацион витаминов и антибиотиков в течение первой недели после введения вакцины в дозах, соответствующих возрасту.

Иммунитет у привитого поголовья взрослых гусей формируется через две недели после второй вакцинации и сохраняется 4 месяца. У ремонтного молодняка иммунитет длится 4 месяца, у гусят, полученных от вакцинированных гусынь - 14-20 дней.

Вакцину применяют в неблагополучных хозяйствах, где гусят, ремонтный молодняк и взрослое поголовье прививают на тех же условиях, что описаны выше.

После диагностирования болезни на хозяйство накладывают ограничение. Больную птицу изолируют и убивают, затем утилизируют.

В некоторых странах с целью сохранения молодняка, проводят пассивную иммунизацию. Для этого 1-2-суточным утятам или гусятам двукратно подкожно вводят гипериммунную сыворотку против возбудителя, полученную на взрослых утках и гусях, что позволяет за 6-8 недель в 2-3 раза сократить гибель молодняка.

Запрещается продажа и вывоз птицы из неблагополучного хозяйства. Комплектование маточного поголовья проводят только вакцинированным молодняком.

Для устранения эпизоотического вируса в объектах внешней среды проводят механическую очистку, а затем дезинфекцию помещений, оборудования и т.д. растворами едкого натрия или формальдегида. Навоз (помет) подвергается биотермической обработке или химической дезинфекции.

Ограничение с хозяйства снимают через 21 день после последней регистрации гибели и вакцинации поголовья утят и уток.

Дополнительная информация. Во ВНИВИП производят вирусвакцину сухую культуральную из штамма П-75 ВНИВИП против вирусного энтерита гусей.

В ВИЭВ выпускают культуральную вакцину из штамма ЛИВ-22 (ВИЭВ) против вирусного энтерита гусей (автор Контримавичус Л.М.).

Список литературы

1. Иващенко, В.Г. Усовершенствование диагностики, мер борьбы и профилактики вирусного энтерита гусей: автореф. дис. … канд. вет. наук / Иващенко В.Г. - Л., 1986. - 25 с.

2. Иммуногенные свойства гидроокисьалюминевой формолвакцины против вирусного энтарита гусят / В.С. Фадин, А.В. Куриленко, В.В. Шаповалова, В.И. Корнеева // Профилактика инфекц. болезней с.-х. ж-ных: cб. науч. тр. - Омск, 1988. - С. 106-122.

3. Контримавичус Л.М. Некоторые биологические свойства вируса энтерита гусят / Л.М. Контримавичус // Бюл. ВИЭВ. - 1970. - Вып. 7. – С. 15

4. Контримавичус, Л.М. Вирус энтерита гусят в культуре клеток почек гусиных эмбрионов / Л.М. Контримавичус, А.Д. Майборода // Бюл. ВИЭВ. – М., 1968. - Вып. 4. – С 5.

5. Контримавичус, Л.М. Вирусный энтерит гусей и меры борьбы с ним / Л.М. Контримавичус // Птицеводство. – 1974. - № 6. - С. 45-46.

6. Контримавичус, Л.М. Вирусный энтерит гусей: автореф. дис. докт. вет. наук. / Л.М. Контримавичус. - М., 1978. - 26 с.

7. Контримавичус, Л.М. Некоторые вопросы инфекционной патологии гусей / Л.М. Контримавичус // Ветеринария. – 1972. - № 8. - С. 66-68.

8. Крылов, М.В. Вирусный энтерит гусят (чума гусей, миозит) / М.В. Крылов, А.Б. Терюханов // Инфекц. и инвазион. болезни водоплавающих птиц. - Л.: Колос, 1975. - С. 14-22.

9. Макогон, В. Профилактика вирусного энтерита гусят / В.Макогон // Птицеводство. – 1979. - № 3. - С. 42.

10. Предупреждение вирусного энтерита гусей / В. Малушко, Б. Трефилов, И. Щеглова, В. Иващенко // Птицеводство. - 1984. - № 5. - С. 31-32.

11. Предупреждение энтерита гусей / В.С. Фадин, А.В. Куриленко, М.А. Радковский, А.А. Орехов // Земля сиб, дальневост. – 1988. - № 1. - С. 47.

12. Результаты изучения инфекционного энтерита гусят (реферат) / Контримавичус Л.М., Семилит И.Л., Л.Н. Клейхменева [и др.] // Ветеринария. – 1966. - № 12. - C. 34-36.

13. Трефилов, Б.В. Специфическая профилактика вирусного энтерита гусей / Б.В. Трефилов // Вирусные болезни с.-х. ж-ных: тез. докл. Всерос. науч.-произв. конф. – Владимир, 1995. - С. 277.

14. Фадель М.М. Диагностика вирусного энтерита гусей методом иммуноферментного анализа: автореф. дис.... канд. биол. наук / Фадель М.М. 1989. - 21с.

15. Фадин, В.С. Вирусный энтерит гусят (Обзор литературы) / В.С. Фадин // Сб. науч. работ СибНИВИ. - Омск, 1980. - Вып. 37. - С. 136-141.

16. Фадин, В.С. Изучение трансовариальной передачи иммунитета при вирусном энтерите гусей / В.С. Фадин // Инфекц. болезни с.-х. ж-ных: сб. науч. тр. СО ВАСХНИЛ. - Новосибирск, 1984. - С. 121-124.

17. Фадин, В.С. Профилактика вирусного энтерита гусят цитратной кровью / В.С. Фадин, Н.М. Мельников // Вопр. диагностики и патогенеза инфекц. и инвазион. заболеваний: науч. тр. - Омск, 1973. - Т. 29, вып. 3. - С. 27-29.

18. Фадин, В.С. Экономический ущерб при вирусном энтерите гусей и экономическая серопрофилактиа / В.С. Фадин // Сб. науч. работ СибНИВИ. – Омск, 1979. - Вып. 34. - С. 138-141.

19. Фадин, В.С. Экспериментальный вирусный энтерит гусят / В.С. Фадин // Сб. науч. работ СибНИВИ. - Омск, 1979. - Вып. 34. - С. 134-137.

20. Фадин, В.С. Эпизоотология вирусного энтерита гусят / В.С. Фадин, В.И. Лапин // Земля сиб., дальневост. - 1974. - № 10. - С. 36-37.

21. Фадин, В.С. Методы инактивации вируса энтерита гусей / В.С. Фадин, А.В. Куриленко // Хронические инфекции ж-ных: cб. науч. тр. СО ВАСХНИЛ. - Новосибирск, 1981. - С. 126-129.

22. Brown, K.E. Goos parvovirus - an automonous member of the dependo -virus genus? / K.E. Brown, S.W. Grcen, N.C. Young // Virology. - 1995. – Vol. 210, N 2. - P. 283-291.

23. Chand, C.F. An outbreak of viral enteritis in goslings in Taiwan / C.F. Chand // J. Vet. Med. Anim. Husbandry. – 1983. - Vol. 42. - P. 37-46.

24. Chehg Youguan. Study on attenuated live vaccine of Muscovy duckling parvovirus / Chehg Youguan, Hu Qilin, Li Yiying // XI^th Int. Congr. World Vet. Poultry Assoc. - Budapest, Hungary, 1997. - P. 255.

25. Derzsy, P. A viral disease of goslings. Epidemiological, clinical, pathological and aetiological studies / P. Derzsy // Acta Vet. Acad. Sci. Hung. - 1967. - Vol. XVII. - P. 4.

26. Dual infections of ducks with Derzsy’s disease and EDS (A-127) viruses / С. Cakala, F. Coudert, E. Salamanowitch, L. Cauchu // Acute Virus Infections of Poultry / ed. J. McFerran. –, 1986. - P. 231-238.

27. Expression of goose parvovirus VP-1 capsid protein by a baculovirus expression system and establishment of fluorescent antibody test to diagnose goose parvovirus infection / K. Takehcoza, T. Nakata, K. Takizawa // Arch. Virol. – 1999. - Vol. 144, N 8. - P. 1639-1645.

28Gough, R.E. Application of the agar gel precipitin and neutralisations to the serological study of goose parvovirus / R.E. Gough // Med. Wet. - 1981. – Vol. 36, N 12– P. 91-94.

29.Hansen H. Derzsy’s disease (parvovirusinfection host gas) / H. Hansen // Danst Vet. Tidsskr. – 1980. – Vol. 63, N 5.

30Kisary, J. Zwalczanie choroby Dery’ego na Wegrezech / J. Kisary //. - P. 708-709.

31Nady, J. A viral disease of goslings II microscopic lesion / Z. Nady, P. Derzsy // Acta.Vet. Acad. Sci. Hung. – 1986. – Vol. XVIII. - P. 13-17.

32 Фадель М.М. Диагностика вирусного энтерита гусей методом иммуноферментного анализа: автореф. дис.... канд. биол. наук / Фадель М.М. 1989. - 21с.

33 Riddell, C. Virus hepatitis in domestic goos in Saskatchewan / C. Riddell // Avian Dis. – 1984. –Vol. 28. - P. 774-782.

34 Samorek-Salamonowicz, E. Propagation of Deszsy’s disease viral in various tissues and condition / E. Samorek-Salamonowicz, H. Czekaj, T. Wujaszka // Bull. Vet. Institute in Pulawy. – 1992. - Vol. 35. - P. 25-30.

35 Schitler, C.H. Demonstration of the vertical transmission of goose hepatitis virus C.H. Schitler // Dtsch.Tierarztl. Wochenschr. - 1972. – Bd. 79, N 8. - S. 202-203.

36 The serologic detection of virus-induced infections in the domestic goose / E.F. Kateta, H. Will, E. Bernius [et al.] // Tierarztl. Prax. Ausg G Crosstiere Nutztiere. – 1998. – Bd. 26, N 4. - S. 234-238.

37 Virus trachetis in golslings in Saskatchewan / C. Riddell, J.V. Hurk, S. Copeland [et al.] // Avian Dis. – 1992. – Vol. 32. - P. 158-163.

38 Yadin, H. Studies on hepatitis vaccines in goose / H. Yadin, D.J. Rooselaur, J. Hoecstra // Tijdschr. Diergeneeckd. – 1977. – Vol. 102, N 5. - P. 318-325.

1.   // Tijdschr. Diergeneeckd. – 1977. – Vol. 102, N 5. - P. 318-325.

 

ПАСТЕРЕЛЛЁЗ

       Пастереллёз (холера, гемморагическая септицемия) - спорадическая энзоотическая контагиозная болезнь домашних и диких птиц, в том числе и уток, характеризующаяся острой и, чаще, хронической формой, септицемией, геморрагическим диатезом и летальностью до 90%.

Пастереллёз - общий термин, используемый для обозначения болезней, вызываемых широко распространенными в природе бактериями - пастереллами. В птицеводстве это известные болезни, такие, как холера, псевдотуберкулез, гусиная инфлюэнция - инфекции, вызываемые Pasteurella.anatipestifer, P.hemolitica или P.gallinarum. Гусиная инфлюэнция близка по проявлению гемофилёзу уток. В литературных источниках инфлюэнцию (гемофилёз) гусей нередко рассматривают как инфекцию R. anatipestifer, а холеру птиц предлагается отличать от инфекции, вызываемой P. gallinarum.

Историческая справка. Пастереллез под названием холера известен с 18 века. В разных странах при опустошительных эпизоотиях среди домашней птицы часто погибали утки. В конце 19-го и начале 20 веков болезнь была зарегистрирована во многих регионах России. С 1958 по 1965 годы пастереллез был отмечен в 64 пунктах страны, что было связано с созданием большого количества утководческих хозяйств и отсутствием эффективной профилактики болезни. Вспышки пастереллеза имеют место и в настоящее время (4, 6, 7).

В Америке (США) холера птиц известна с 1880 года. Впервые среди диких птиц болезнь зарегистрирована в 1943 году. С 1970 года отмечают тенденцию увеличения вспышек болезни в некоторых штатах США и Канады.

Экономический ущерб складывается из потерь от высокой летальности до 55% (Фадин В., 1966), снижения яйценоскости, преждевременного прекращения эксплуатации стада и замены его здоровым, затрат на проведение лечебно-профилактических мероприятий.

Возбудитель - Pasteurella multocida рода Pasteurella. Большинство пастерелл существуют как сапрофиты, некоторые из них известны как патогенные агенты. Для изучения морфологических свойств бактерий используют окраски по Граму, Романовскому-Гимзы, метиленовым-синим, феноловым тионином или голубым толюидином. В патологическом материале обнаруживают короткие, мелкие, полиморфные, биополярные грамотрицательные коккобактерии длиной 1.4 + 0.4 мкм и шириной 0.4 + 0.1 мкм, неспорообразующие; аэробы или факультативные анаэробы. В молодых культурах преобладают кокковые изолированные неподвижные формы или цепочки из нескольких элементов с наличием мукоидной капсулы.

Антигенная структура пастерелл полностью не изучена. Тем не менее, методами преципитации, разбухания капсулы и гемагглютинации по наличию капсулярного полисахарида идентифицированы четыре типа пастерелл - А, В, Д и Е. Колонии типов А и Д чаще на МПА бывают слизистыми. В капсулах бактерий типов А и Д присутствует гиалуроновая кислота, тогда как в типах В и Е отсутствует.

Выделено 16 соматических антигенов пастерелл, из которых 1, 3, 4 и 12 были обнаружены в изолятах культур, выделенных от уток в США в период с 1976 по 1988 годы.

Пастерелл культивируют на обычных питательных средах, предпочтительно не обогащенных 5% сывороки крови птиц или млекопитающих, а также асцитной жидкости. В МПБ отмечают равномерное легкое помутнение с пленкой, которая ферментируется и оседает на дно. На МПА образуются мелкие колонии диаметром около 1 мм, круглые, плоские, сероватые или прозрачные с гладкими ровными краями. На агаре с сывороткой различают четыре типа колоний: Ф (флуоресцирующие) и Т (тусклые) - образуют чаще очень вирулентные бактерии пастерелл; Г (голубые) - более мелкие, просвечивающиеся - формируют менее вирулентные бактерии; П (промежуточные) и С (слизистые) - вязкие, соответственно, колонии вирулентных бактерий в средней степени и слабо вирулентных. Пастерелла мультоцида ферментирует маннит, сорбит, сахарозу с выделением кислоты, образует индол и сероводород, не обладает активностью к лактозе, мочевине и β-лактозе. Отсутствует гемолизин. Дополнительно обладает свойствами, характерными для своего рода: восстанавливает нитраты, ферментирует глюкозу, обладает активностью каталазы, оксидазы, не обладает протеолитическими свойствами, отрицательна в реакции Фогес-Проскауэра и вариабельна в отношении трегалозы и ксилозы.

Пастереллы культивируются как аэробы и анаэробы при плюс 37⁰С рН 7.2-7.8, но могут культивироваться также, имея рН от 6.0 до 9.0, при определеной композиции сред в течение 16-24 часов. Бактерии выращивают на средах, обогащенных гидролизатом, сывороткой и/или пептоном. Кровь или сыворотка крови лошади, крупного рогатого скота, коз и овец могут ингибировать рост P. multocida, чего не отмечают при использовании сывороток цыплят, уток и свиней.

Гриффиц (1974) установил, что специфические антитела, комплемент и трансферин сдерживают репродукцию P. multocida.

Таблица 22