Стандартные операционные процедуры ведения преаналитического этапа деятельности клинико-Диагностических лабораторий

СТАНДАРТНЫЕ ОПЕРАЦИОННЫЕ ПРОЦЕДУРЫ ВЕДЕНИЯ ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОГО ЭТАПА ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ

O.А. Тарасенко - канд. мед. наук, зав. диагностико-серологической лабораторией,

О.Н. Осипова - врач клинической лабораторной диагностики,

Ю.Ф. Тарасенко - врач клинической лабораторной диагностики,

М.В. Еремина - врач клинической лабораторной диагностики,

Станция переливания крови Департамента здравоохранения г. Москвы

 

Развитие лабораторной диагностики в последние годы привело к расширению номенклатуры лабораторных анализов, результаты которых играют все большую роль в диагностике и выборе тактики лечения больных. В свою очередь с увели­чением объема лабораторных исследований растет количество ошибочных дан­ных, которые могут отрицательно влиять на диагностический и лечебный про­цессы, повышать стоимость лабораторных анализов (повторные пробы, контроль и т. д.) и соответственно увеличивать расходы здравоохранения. Даже если мето­дика выполнения анализа полностью соблюдена, на его результаты все равно мо­гут влиять различные факторы. Главными причинами лабораторных ошибок (60-80%) являются преаналитические факторы, такие как неправильные взятие пробы, обращение с образцом и его транспортировка и т. д.

Так, например, при взятии капиллярной крови сильно влияние факторов, ко­торые могут существенно изменять исследуемые показатели (глубина прокола кожи, форма и острота скарификатора, сдавление пальца, разбавление пробы межклеточной жидкостью, активация свертывания при контакте с тканевыми ак­тиваторами и т. д.). Поэтому для обеспечения максимальной стандартизации об­разцов рекомендуется проводить исследования проб венозной крови. Взятие ве­нозной крови для проведения анализов является самой частой инвазивной процедурой. При этом ее кажущаяся простота и отсутствие четких стандартов проведения, а также использование устаревших материалов (стеклянные пробир­ки, самостоятельное приготовление добавок и т. д.) приводят к ошибкам на преаналитическом этапе, вызывающим большие потери материальных средств и ра­бочего времени медперсонала из-за назначения повторных анализов, расхода дорогостоящих реагентов и т. д.

Для уменьшения количества ошибок на преаналитическом этапе необходи­мо соблюдать выполнение стандартных операционных процедур (СОП). Ниже представлены СОП, которые могут быть использованы заведующими КДЛ для разработки собственных документов в деятельности клинико-диагностических лабораторий и процедурных кабинетов ЛПУ

Область применения СОП

Главным образом СОП используются:

• при технологическом процессе подготовки пациента к лабораторным иссле­дованиям;
• венепункции, взятии капиллярной крови;
• взятии, сборе биологического материала;
• центрифугировании биологического материала;
• транспортировке биологического материала в лабораторию.

Значение преаналитического этапа в лабораторной диагностике

Преаналитический этап - важная составляющая качества деятельности всей лаборатории, который включает в себя подготовку пациента, процедуру взятия, сбора, транспортировки и обработки биологического материала перед проведе­нием лабораторных исследований. На него влияет следующий спектр факторов:

· режим питания пациента, его физическая активность, стиль жизни, прием лекарственных препаратов, масса тела, курение, употребление спиртных на­питков и т. д.;

· способ и качество взятия биологического материала;

· время взятия материала (циркадные ритмы, фазы менструального цикла, время последнего приема пищи и т. д.);

· количество расходного материала;

· положение тела при взятии материала;

· место взятия материала;

· вид пробирок, антикоагулянтов, стабилизаторов, сепарирующих гелей;

· маркировка пробирок;

· техника идентификации проб отдельных пациентов;

· время, температура и механические воздействия во время транспортировки пробы от места взятия до лаборатории;

· стандартизация способов доставки проб в отдаленные лаборатории;

· способ хранения проб в лаборатории.

ПАМЯТКИ ПАЦИЕНТУ ОБ ОСОБЕННОСТЯХ ПОДГОТОВКИ К ЛАБОРАТОРНЫМ ИССЛЕДОВАНИЯМ

Исследование крови

Вы должны подготовить себя к этому исследованию следующим образом: воздержаться от физических нагрузок, приема алкоголя и лекарственных веществ, изменений в питании в течение 24 ч до взятия крови.

Вам не следует принимать пищу после ужина, лечь спать нужно накануне в обычное для вас время и встать не позднее, чем за час до взятия крови.

Нельзя ничего есть в течение 12 ч, предшествующих началу исследования, но голодание ни в коем случае не должно быть более 16 ч.

Нельзя пить соки, чай, кофе и другие напитки. Используйте для питья воду.

Утром после подъема воздержитесь от курения и физической нагрузки.

Если вы испытываете трудности с отменой лекарственных препаратов, то обязательно сообщите об этом лечащему врачу.

Очень важно, чтобы вы точно следовали указанным рекомендациям, т. к. толь­ко в этом случае будут получены правильные результаты исследования крови.

Глюкозотолерантный тест

Необходимо изменить диету и исключить прием лекарственных препаратов (по рекомендации врача), по меньшей мере, за 3 дня до проведения теста. Очень

важно, чтобы вы точно исполняли приведенную ниже инструкцию, т. к. только в этом случае будут получены достоверные результаты исследования крови.

Вы должны следовать правилам:

· количество углеводов в пище должно быть не менее 125 г в день в течение 3 дней перед проведением теста;

· нельзя ничего есть в течение 12 ч, предшествующих началу теста, но голода­ние ни в коем случае не должно быть более 16 ч;

· перед исследованием можно пить только воду (нельзя пить соки, чай, кофе и другие напитки);

· необходимо исключить физическую нагрузку в течение 12 ч перед началом теста.

Если вы принимаете какие-то лекарственные препараты помимо тех, кото­рые назначил лечащий врач, то необходимо сообщить ему об этом, т. к. эти веще­ства могут повлиять на результаты исследования.

Вы должны сообщить врачу о своем самочувствии перед исследованием, обя­зательно упомянув при этом об имеющейся беременности и (или) стрессе.

Накануне вечером перед проведением теста подойдите к процедурной медицин­ской сестре и уточните, где вам необходимо находиться утром для его выполнения.

Исследование мочи

Вы должны подготовить себя к этому исследованию следующим образом:

· воздержаться от физических нагрузок;

· приема алкоголя;

· лекарственных веществ, особенно влияющих на цвет мочи (амидопирин, фуразолидон, ибупрофен, метронидазол и т. д.), либо сообщить об их приеме врачу;

· лечь спать накануне в обычное для вас время.

При плановом назначении анализа вы должны собрать первую утреннюю порцию мочи. Утром после подъема вам необходимо провести тщательный туа­лет наружных половых органов, промыв их под душем с мылом, чтобы в мочу не попали выделения из них.

При назначении теста с исследованием суточного количества мочи следует точно соблюдать 24-часовой период ее сбора.

Для анализа мочи по Зимницкому вы должны соблюдать обычный режим питания, но учитывать количество выпитой жидкости.

При исследовании йода в моче (йодурия) за 2-3 дня до начала сбора должны быть исключены лекарственные препараты, содержащие йод и бром. За 3 ч до сбора мочи должны быть исключены значительные физические нагрузки.

Перед проведением "трехстаканной пробы" мочи вы не должны мочиться в течение 3-5 ч.

Нельзя сдавать мочу во время менструации.

Исследование кала

Вы должны подготовить себя к этому исследованию следующим образом:

· следует соблюдать диету, предписанную вашим лечащим врачом;

· нужно воздержаться от приема лекарственных препаратов, влияющих на секреторные процессы в желудке, на перистальтику желудка и кишечника, а также меняющих цвет кала (индометацин, препараты железа, сенна, сулема, фенолфталеин и т. д.).

Перед исследованием кала на скрытую кровь нельзя принимать некоторые лекарственные вещества, в т. ч. аскорбиновую и ацетилсалициловую кислоту. Прием лекарственных препаратов необходимо согласовать с врачом.

Перед исследованием кала на скрытую кровь из диеты должны быть исклю­чены мясо, рыба, помидоры, огурцы, цветная капуста, зеленые овощи.

Исследование мокроты

Перед сбором мокроты необходимо тщательно почистить зубы, прополо­скать рот и глотку кипяченой водой. Ограничений в режиме питания и приеме лекарственных препаратов нет.

Исследование слюны

За 12 ч до исследования необходимо исключить прием пищи, алкоголя и ле­карственных препаратов (по согласованию с врачом).

Перед сбором слюны необходимо отказаться от использования зубной пасты и удалить зубные протезы. Зубы чистят без зубной пасты, затем прополаскивают рот кипяченой водой.

Подготовка обследуемых

Взятие венозной крови производится натощак, в утренние часы. При взятии венозной крови необходимо учитывать ряд факторов которые могут повлиять на результат гематологических исследований: физическое перенапряжение (бег, быстрая ходьба, подъем по лестнице), эмоциональное возбуждение, прием пищи накануне исследования, купение, прием алкоголя и т.д. Для исключения этих факторов, следует соблюдать следующие условия подготовки пациентов:

- взятие венозной крови осуществляется после 15-минутного отдыха обследуемого;

- пациент во время взятия сидит, у тяжелых больных взятие крови может осуществляться лежа.

- курение, прием алкоголя и пищи непосредственно перед исследованием исключаются;

 

Основной способ взятия венозной крови для лабораторного исследования – пунктирование вены. Венозную кровь, как правило, забирают из локтевой вены. В случае необходимости ее можно получить из любой вены (запястья, тыла ладони, над большим пальцем и т.д.). У новорожденных и грудных детей кровь обычно берется из лобной, височной или яремной вены.

При взятии крови из вены необходимо избегать: мест шрамов, гематом; вен, используемых для переливания растворов; ножных вен (у больных диабетом, при нарушениях периферического кровотока, ангиопатиях).

 

Оборудование

Для венепункции можно использовать три варианта пункционных систем:

- одноразовые пластиковые системы (вакутейнеры), состоящие из контейнера с навинчивающейся на него одноразовой иглой и пробирки с плотно прилегающей пробкой и вакуумом внутри;

- одноразовые шприцы с подходящим диаметром иглы;

- иглы с внутренним диаметром 0,55-0,65 мм.

Дополнительное оборудование

- манжета или жгут для пережатия руки;

- спирт 700;

- ватные или марлевые тампоны;

- бинт;

- пластырь.

При взятии крови следует строго соблюдать правила асептики и антисептики в соответствии с “Инструкцией по мерам профилактики распространения инфекционных заболеваний при работе в клинико-диагностических лабораториях лечебно-профилактических учреждений”, утвержденной МЗ СССР 17. 01. 1991 г. и действующей до настоящего времени.

Взятие крови необходимо проводить в одноразовых резиновых перчатках; в тех случаях, когда это невозможно, перед каждым взятием перчатки следует обрабатывать 70⁰ спиртом. Все оборудование для взятия крови, включая одноразовые системы, шприцы, иглы, бинты, ватные и марлевые тампоны, пластыри должно быть стерильным.

Дезинфекция и стерилизация оборудования проводится в соответствии с ОСТ-ом 42-21-2-85 “Стерилизация и дезинфекция изделий медицинского оборудования” и приказом МЗ СССР “О мерах по снижению заболеваемости вирусным гепатитом в стране” (1989 г.) и “Инструкцией по противоэпидемическому режиму в лабораториях диагностики СПИД” 42-28/39-90 от 05.06.1990 г.

 

Приготовление сыворотки

Венозная кровь, полученная без антикоагулянтов в центрифужную стеклянную пробирку, отстаивается в ней при комнатной температуре (15-200С) в течение 30 минут до полного образования сгустка. По окончании образования сгустка пробирки открывают и осторожно проводят тонкой стеклянной палочкой или запаянным капилляром Пастеровской пипетки по внутренним стенкам пробирки по окружности в верхнем слое крови для отделения столбика сгустка от стенок пробирки. Сыворотку сливают в другую центрифужную пробирку, придерживая сгусток стеклянной палочкой, и центрифугируют, либо центрифугируют в тех же, первичных, пробирках.

 

Центрифугирование

После ретракции сгустка пробы центрифугируют при относительной центробежной силе RCF от 1000 до 1200 g (максимально до 1500 g) в течение 10 минут.

В случае использования микропробирок и центрифуги для них центрифугирование проводят при 6000-15000 g в течение 1,5 минут. После центрифугирования сыворотку сливают во вторичные (транспортные) пробирки. Сыворотка не должна быть гемолизированной.

Плазма получается из крови путем отделения клеток крови. Она представляет собой бесклеточную надосадочную жидкость, которая получается при центрифугировании крови, свертываемость которой ингибирована добавлением антикоагулянтов тотчас после взятия. В плазме содержатся факторы свертывания крови. В связи с тем, что плазма и сыворотка содержат около 93% воды, в отличае от цельной крови, которая содержит около 81% воды, концентрация компонентов в плазме на 12% выше, чем в цельной крови. Это может иметь принципиальное диагностическое значение при исследовании активности, например ЛДГ у которого наиболее высокая концентрация наблюдается в сыворотке крови, чем в плазме.

Наряду с коммерческими системами для получения сыворотки при взятии венозной крови широко применяются коммерческие системы для получения плазмы. Они представляют собой пробирки или устройства типа шприцев (“вакутейнер”) с вакуумом внутри, содержащие различные антикоагулянты и/или ингибиторы гликолиза. Как и в случае устройств для сыворотки, эти пробирки для плазмы имеют разные варианты, содержащие разделительные гели и гранулят из полистирола, ускоряющие получение плазмы, облегчающие транспортировку и хранение. В них уже имеются антикоагулянты и метки до которых следует набирать кровь.

 

МЕТОДИКА ПОЛУЧЕНИЯ ПЛАЗМЫ (без коммерческих разделительных устройств)

Оборудование

1. Центрифужные стеклянные, химически чистые, сухие пробирки.

2. Центрифуга, обеспечивающая центрифугирование до 1500 xg.

3. Химически чистые, сухие химические пробирки.

4. Крышки для пробирок или лабораторная пленка типа “Парафильм”.

 

Приготовление плазмы

Венозную кровь, полученную с антикоагулянтом немедленно после взятия перемешивают переворачиванием пробирок с кровью, закрытых крышками, не менее 5 раз. Перемешивание должно осуществляться без встряхивания и пенообразования. Время между началом наложения жгута и смешиванием крови с антикоагулянтом не должно превышать 2 минут. После уравновешивания пробирок с кровью, их центрифугируют при RCF 1000-1200 xg, но не более 1500 xg, в течение 10-15 минут. Плазму немедленно сливают в транспортную центрифужную или химическую пробирку. Пробирку закрывают крышкой.

 

Общие положения

У взрослых пациентов взятие капиллярной крови производится:

· при ожогах, занимающих большую площадь поверхности тела пациента;

· при наличии у пациента очень мелких вен или их труднодоступности;

· при выраженном ожирении пациента;

· при установленной склонности к венозному тромбозу;

· для проведения теста по толерантности к глюкозе;

· для исследования дневных колебаний концентрации глюкозы;

· для определения времени свертывания крови и длительности кровотечения.

Прокол кожи является методом выбора для взятия крови в педиатрии. Боль­шие объемы крови при венепункции могут вызвать анемию у детей, особенно у новорожденных или недоношенных.

Не пунктируются пальцы новорожденных, т. к. кость находится на глубине всего 1-2 мм под поверхностью кожи. Используйте для пункции кожу пятки.

Подготовка рабочего места

Для взятия капиллярной крови на рабочем месте необходимо иметь:

· передвижные столики для расходных материалов;

· кресло для пациента;

· скарификаторы (длина копья зависит от размеров пациента);

· пробирки - системы для взятия капиллярной крови (СВКК);

· перчатки;

· тампоны со спиртом или индивидуально упакованные салфетки, пропитан­ные спиртом;

· маркеры;

· антисептики;

· стерильные марлевые салфетки;

· лейкопластырь;

· емкости с дезинфицирующим раствором;

· контейнеры для отходов;

· компрессы для согревания места пункции;

· штативы.

СБОР МОЧИ

В зависимости от цели исследования образцы мочи собирают либо в виде отдельных порций, либо за определенный промежуток времени.

Первая утренняя моча (после сна) используется для общеклинического ис­следования. Вторая (средняя) утренняя порция мочи - для количественного исследования в соотношении с выделением креатинина. микробиологического исследования, ПЦР-диагностики и пробы Нечипоренко. Суточная моча - для ко­личественного определения экскреции аналитов, пробы Зимницкого.

Правила сбора мочи

По возможности, надо собирать мочу в ту емкость, которая будет доставлена в лабораторию. Брать мочу из судна, утки или горшка нельзя! Если в лабораторию доставляется не вся собранная моча, то перед тем как отлить ее часть в контейнер, необходимо перемешать всю порцию.

Консервация проб мочи очень важна для сохранения ее исходных свойств и предупреждения роста бактериальной флоры. В первую порцию собираемой за сутки мочи в зависимости от назначенного вида исследования добавляют различ­ные консерванты:

· тимол (несколько кристаллов вещества на 100 мл мочи) - для определения концентрации большинства компонентов;

· азид натрия (0,5 или 1,0 г на все количество суточной мочи) - для определе­ния концентрации глюкозы, мочевины, мочевой кислоты, калия, кальция;

· соляная кислота (25 мл 6 моль/л на объем суточной мочи) - для определения концентрации катехоламинов, кальция, магния, фосфатов;

· карбонат натрия (2 г на литр мочи) - для определения концентрации порфи-ринов и уробилиногена.

Для некоторых проб мочи консервация небезразлична, поэтому предпочти­тельнее охлаждение. Для исследования осадка мочи важно использовать собран­ную мочу, без консерванта.

Сбор мочи у детей

Сбор мочи у детей требует особого внимания из-за возможности загрязне­ния мочи калом.

Для сбора мочи у новорожденных используют особую емкость, не вызываю­щую аллергических реакций, которая закрепляется в промежности. Проверяется контейнер через каждые 10-15 мин.

Необходимо дать подробные письменные или устные инструкции пациенту или родителям маленьких детей и предупредить о том, что в случае нарушения рекомендаций моча будет непригодна для лабораторного исследования.

СБОР КАЛА

Сбор кала должен осуществляться в чистые сухие пластиковые или стеклян­ные контейнеры с герметично закрывающимися крышками. Недопустимо на­правлять кал на исследование в спичечных или картонных коробках. Для бакте­риологических исследований посуда должна быть стерильной.

В КДЛ для сбора кала целесообразно использовать следующие приспособления:

· пластиковые (полипропилен) контейнеры с ложечкой;

· пластиковые (полипропилен) герметичные контейнеры (тубы) с ложечкой-шпателем на 1 мл для сбора точного количества кала (1 мл соответствует 1 г образца).

Правила сбора кала

Результаты копрологического исследования зависят от правильной подго­товки пациента и от правильного сбора материала.

После необходимой подготовки пациента кал собирают за одну дефекацию. Для исследования достаточно 10-15 г кала.

Кал не должен содержать посторонних примесей (мочи, отделяемого мочепо­ловых органов). Нельзя собирать фекалии после клизм. Если необходимо знать точное количество испражнений, то пустую емкость перед сбором и после сбора материала взвешивают.

Для микробиологического исследования кала на кишечный дисбактериоз и для ПЦР-диагностики сбор материала производится до начала лечения антибак­териальными и химиотерапевтическими препаратами.

Пациенту рекомендуется помочиться в унитаз, далее путем естественной де­фекации в подкладное судно или горшок собираются испражнения (следить, что­бы не попала моча).

Кал, взятый из разных мест, в количестве 1 г, собирается в стерильную ем­кость.

Перед сбором материала подкладное судно (горшок) предварительно обра­батывают дезинфицирующими средствами, промывают несколько раз проточ­ный водой, ополаскивают кипятком. Емкость с собранным материалом маркиру­ют и немедленно направляют в лабораторию.

Для паразитологических исследований кала специальной подготовки не тре­буется. Ложечкой собирают 10-15 г теплого кала, взятого из разных мест.

 

СБОР МОКРОТЫ

Для сбора мокроты целесообразно использовать широкогорлые стерильные пла­стиковые контейнеры вместимостью не менее 50 мл с завинчивающейся крышкой.

Правила сбора мокроты

После специальной подготовки пациент утром до приема пищи собирает мокроту.

Пациента следует предупредить о том, что собирать необходимо только мок­роту, отделяющуюся при кашле, а не при отхаркивании.

Для микробиологического исследования мокроту собирают в стерильный контейнер с соблюдением правил асептики.

Емкость с мокротой маркируют и как можно скорее доставляют в лабораторию.

СБОР СЛЮНЫ

Слюна используется для исследования содержания ряда гормонов, лекарст­венных веществ, в т. ч. и лекарственного мониторинга.

Образцы могут быть получены из одной железы или являться смесью секре­тов различных желез (смешанная слюна). Легкость в сборе слюны делает ее иде­альной для самостоятельного исследования дома и в случаях, когда взятие крови не желательно, например у новорожденных. Ограничения в использовании слю­ны связаны с ее вязкостью и недостаточным объемом.

Правила сбора слюны

Существует несколько способов сбора: смешанную слюну выплевывают изо рта или отсасывают со дна рта одноразовым шприцем и переносят в пробирку с транспортной средой. Также сбор слюны может осуществляться с помощью уст­ройств (тампонов, шариков), состоящих из различных адсорбирующих материа­лов (хлопок, вискоза, полимеры).

ТЕХНОЛОГИЧЕСКИЙ ПРОЦЕСС ТРАНСПОРТИРОВКИ И ХРАНЕНИЯ
БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА НА ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОМ ЭТАПЕ

Важнейшим моментом в обеспечении качества клинических лабораторных ис­следований является доставка проб биологического материала в лабораторию. Транс­портировка образцов в лабораторию может осуществляться различными путями.

Если взятие и сбор биологического материала производится в том же учреж­дении, где расположена лаборатория, то контейнеры с образцами должны быть доставлены как можно быстрее, максимум в течение 2 ч (быстрая транспорти­ровка). Быстрая транспортировка увеличивает достоверность результатов лабо­раторных исследований. Охлаждение, использование транспортной среды или консерванта не обязательно.

Несколько другие требования предъявляются к биологическому материалу, взятому и собранному в других учреждениях, который требует длительной транс­портировки (отсроченная транспортировка).

При отсроченной транспортировке необходимо строго соблюдать опреде­ленные правила безопасности. Не должно возникнуть риска ни для людей, ни для окружающей среды. Кроме того, необходимо обеспечить целостность и герметич­ность образцов биологического материала. Образцы следует упаковывать так, чтобы они противостояли ударам, тряске, изменениям давления, температуры и другим воздействиям внешней среды. Нужно избегать протекания содержимого образцов, прямого воздействия света на них В качестве упаковочного материала при транспортировке нельзя использовать стекло.

Рекомендуется следующая структура упаковки для транспортировки биоло­гического материала:

· внутренний контейнер/упаковка для образцов биологического материала; ~ адсорбирующий материал (помещается между внутренним и наружным кон­тейнерами);

· наружный контейнер/упаковка, с указанием информации об образце; ~ коробка, сумка или посылочная упаковка.

Для транспортировки замороженных и охлажденных образцов необходимы специальные контейнеры, поддерживающие необходимую температуру, или пор­тативные холодильники.

Контейнеры с инфекционным материалом должны быть помечены специаль­ной надписью.

В микробиологическую лабораторию посевы транспортируются в термокон­тейнерах (биксах) отдельно от другого клинического материала.

Важным фактором обеспечения качества клинических лабораторных иссле­дований является время доставки биологического материала в лабораторию, ко­торое должно быть четко определено и постоянно контролироваться каждые 30/60 мин. Время взятия биологического материала обязательно указывается в за­явках или направлениях на лабораторные исследования.

ТРЕБОВАНИЯ К ТРАНСПОРТИРОВКЕ БИОЛОГИЧЕСКОГО МАТЕРИАЛА.

Правила центрифугирования

Центрифугирование крови для получения сыворотки проводится через 30 мин после взятия (время полного сворачивания крови).

Кровь для получения сыворотки или плазмы центрифугируют в течение 10-15 мин при ускорении 1000-1200 g.

Кровь с добавлением цитрата центрифугируют 15 мин при 2000 g. Для получе­ния плазмы, свободной от тромбоцитов, центрифугирование длится 15-30 мин при 2000-3000 g.

Центрифугирование крови в пробирках малого объема с антикоагулянтом и без него, а также капиллярной крови выполняется в микроцентрифугах при 6000-15 000 g в течение 90 с.

Центрифугирование обычно проводится при температуре от 20 до 22 °С. Для аналитов (адренокортикотропный гормон, ренин), которые неустойчивы при комнатной температуре, центрифугирование осуществляется при +4 °С. Однако следует учитывать, что охлаждение может привести к выходу калия из клеток.

После взятия сыворотки или плазмы образцы крови не следует подвергать повторному центрифугированию.

При осаждении гепаринизированной крови сила и время центрифугирова­ния должны быть достаточными для удаления из плазмы кровяных пластинок.

Недостаточно полное осаждение тромбоцитов приведет к серьезному увеличе­нию концентрации калия, лактатдегидрогеназы, кислой фосфатазы и неорганиче­ских фосфатов.

Для получения осадка мочи транссудата, экссудата и другой биологической жидкости на микроскопическое исследование центрифугирование проводят при ускорении 800 g в течение 10 минут при комнатной температуре.

СПИСОК ИСПОЛЬЗОВАННОЙ ЛИТЕРАТУРЫ

1.Долгов В.В., Мошкин А.В., Малахов В.Н. и др. Обеспечение качества в лабо­раторной медицине: Учеб. пособие. М.: РМАПО, 1997.

2. Козлов А.В. и др. Влияние лекарственных препаратов на лабораторные по­казатели: Учеб. пособие для врачей-слушателей. СПб.: МАПО, 1997.

3. Кудрявцева Л.В., Конарева Т.Н., Горбатенко Е.В., Попова Т.И., Говорун В.М. Правила взятия и доставки биологического материала для лабораторных исследо­ваний в НПФ "ЛИТЕХ": Методическое пособие для врачей-клиницистов. М., 2004.

4. Меньшиков В.В., Пименова Л.М., Кишкун А.А. Правила ведения преаналитического этапа клинических лабораторных исследований: Проект нормативного документа. Лабораторная диагностика России, 2004-2005.

5. Методические рекомендации "Забор, транспортировка, хранение клиниче­ского материала для ПЦР-диагностики". Министерство здравоохранения РФ. Цен­тральный научно-исследовательский институт эпидемиологии МЗ РФ. М., 2004.

6. Медицинская лабораторная диагностика (Программы и алгоритмы): Спра­вочник / Под ред. А.И. Карпищенко. СПб.: Интермедика. 1997.

7. Назаренко Г.И., Кишкун А.А. Клиническая оценка результатов лабораторных исследований. М.: Медицина, 2000.

8. Назаренко Г.И., Кишкун А.А. Управление качеством лабораторных исследований. М.: Медицина, 2001.

9. Руководство "Преаналитический этап лабораторного анализа". Чешская система внешнего контроля качества по рекомендации Чешского общества кли­нической биохимии ЧЛС ЕП. Пардубице. 1999. Адаптированный перевод канд.мед. наук Почтарь М.Е.

10. Синельников Р.Д., Синельников Я.Р. Атлас анатомии человека. М.: Медици­на, 1992.

11. Dennis J. Ernst MT, Catherine Ernst R.N. Phlebotomy for Nurses and Nursing Personnel "HealthStar Press", January 1,2001.

12. D. Garza, K. Becan-Mc.Bride. Phlebotomy Handbook. 6^r Edition,"Prentice Hall". 2002.

13. NCCLS. H3-A4, Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture; Approved Standard-Fourth Edition. NCCLS document H3-A4 [ISBN 1-56238-350-7] NCCLS, 940 West Valley Road, Suite 1400, Wavne, Pennsylvania 19087 USA, 1998.

14. S. Narayanan. The preanalytic phase. An important component of laboratory medicine // Am. J. Clin. Pathol. 2000. № 113. P. 429-452.

15. Ruth £., Bs, Mt McCall, Cathee M., Bs, Mt, Cls, Tankersley. Phlebotomy Essentials, "Lippincott Williams & Wilkins Publishers; 3rd edition", 2002

 

СТАНДАРТНЫЕ ОПЕРАЦИОННЫЕ ПРОЦЕДУРЫ ВЕДЕНИЯ ПРЕАНАЛИТИЧЕСКОГО ЭТАПА ДЕЯТЕЛЬНОСТИ КЛИНИКО-ДИАГНОСТИЧЕСКИХ ЛАБОРАТОРИЙ

O.А. Тарасенко - канд. мед. наук, зав. диагностико-серологической лабораторией,

О.Н. Осипова - врач клинической лабораторной диагностики,

Ю.Ф. Тарасенко - врач клинической лабораторной диагностики,

М.В. Еремина - врач клинической лабораторной диагностики,

Станция переливания крови Департамента здравоохранения г. Москвы

 

Развитие лабораторной диагностики в последние годы привело к расширению номенклатуры лабораторных анализов, результаты которых играют все большую роль в диагностике и выборе тактики лечения больных. В свою очередь с увели­чением объема лабораторных исследований растет количество ошибочных дан­ных, которые могут отрицательно влиять на диагностический и лечебный про­цессы, повышать стоимость лабораторных анализов (повторные пробы, контроль и т. д.) и соответственно увеличивать расходы здравоохранения. Даже если мето­дика выполнения анализа полностью соблюдена, на его результаты все равно мо­гут влиять различные факторы. Главными причинами лабораторных ошибок (60-80%) являются преаналитические факторы, такие как неправильные взятие пробы, обращение с образцом и его транспортировка и т. д.

Так, например, при взятии капиллярной крови сильно влияние факторов, ко­торые могут существенно изменять исследуемые показатели (глубина прокола кожи, форма и острота скарификатора, сдавление пальца, разбавление пробы межклеточной жидкостью, активация свертывания при контакте с тканевыми ак­тиваторами и т. д.). Поэтому для обеспечения максимальной стандартизации об­разцов рекомендуется проводить исследования проб венозной крови. Взятие ве­нозной крови для проведения анализов является самой частой инвазивной процедурой. При этом ее кажущаяся простота и отсутствие четких стандартов проведения, а также использование устаревших материалов (стеклянные пробир­ки, самостоятельное приготовление добавок и т. д.) приводят к ошибкам на преаналитическом этапе, вызывающим большие потери материальных средств и ра­бочего времени медперсонала из-за назначения повторных анализов, расхода дорогостоящих реагентов и т. д.

Для уменьшения количества ошибок на преаналитическом этапе необходи­мо соблюдать выполнение стандартных операционных процедур (СОП). Ниже представлены СОП, которые могут быть использованы заведующими КДЛ для разработки собственных документов в деятельности клинико-диагностических лабораторий и процедурных кабинетов ЛПУ

Область применения СОП

Главным образом СОП используются:

• при технологическом процессе подготовки пациента к лабораторным иссле­дованиям;
• венепункции, взятии капиллярной крови;
• взятии, сборе биологического материала;
• центрифугировании биологического материала;
• транспортировке биологического материала в лабораторию.