Интегрированные системы защиты тепличных культур

В современном сельском хозяйстве такая стратегия за­щиты растений получила наименование IPM (Integrated Pest Management), дословно — "Интегрированное Управление Вредителями". Это обозначение принято сейчас во всем мире, но в переводе на русский язык не очень бла­гозвучно, поэтому в отечественной литературе IPM принято по-прежнему обозначать термином "Интегрированная система защиты растений". Она ос­нована на знании популяционной динамики живых компонентов агроценоза (растений, фитофагов и их естественных врагов), оценке взаимоотношений

между ними и окружающей средой а также учете требований экологической и санитарно-гигиенической безопасности для производителей и потребите­лей сельскохозяйственной продукции.

В 1980-х была разработана подобная комплексная биологическая систе­ма защиты огурца от основных вредителей и некоторых заболеваний (Мето­дические указания.., 1981). Ее авторы стремились создать беспестицидную технологию выращивания культуры. Система базировалась на профилакти­ческих и агротехнических мероприятиях и предусматривала возможность при­менения пяти видов энтомофагов и акарифагов и четырех микробиологичес­ких препаратов. Она получила развитие в тех хозяйствах, где были созданы биолаборатории, в которых производились эти энтомоакарифаги и биопре­параты.

Применение микробиологических средств защиты основано на разра­ботках ряда научных учреждений и подобно химическим пестицидам регла­ментируется "Списком пестицидов и агрохи ми катов", разрешенных к при­менению. Следует учитывать действие препаратов не только на вредителей, против которых их применяют, но и на другие компоненты агроэкосистемы.

Использование интегрированных систем защиты немыслимо без точно­го видового определения и учета вредителей, возбудителей болезней, а также полезных насекомых и клещей. Необходимо организовать регулярное обсле­дование теплиц. При этом должны вестись фенологические наблюдения за сроками появления и особенностями развития вредителей и фитопатоген-ных микроорганизмов — возбудителей болезней растений. Это помогает вов­ремя обнаружить первичный очаг и еще на ранней стадии применить необ­ходимые меры защиты.

Порядок обследования растений в теплицах во многом зависит от сезо­на. Например, в ранний период важно своевременно обнаружить очаги пау­тинного клеща. Особое внимание обращают на растения по периметру теп­лицы, около центральной дорожки. Летом при обнаружении очага размно­жения паутинных клещей важно определить его размер, чтобы рассчитать необходимое количество фитосейулюса для последующих выпусков.

При обследовании осматривают различные части растений: верхние лис­тья и нижние стороны листьев, основания стеблей и вершины побегов. Так, при осмотре верхних листьев можно обнаружить первых имаго оранжерей­ной белокрылки.

Первичный очаг вредителя не всегда удается обнаружить вовремя. От­нюдь не всегда тепличное хозяйство располагает необходимым ассорти­ментом биологических средств и может получить его в нужное время и в необходимом количестве. Именно поэтому часто возникает необходимость в применении пестицидов. Еженедельное сплошное обследование расте­ний в теплицах дает возможность свести объемы химических обработок к минимуму и тем самым сохранить большую часть популяций выпущенных энтомофагов. Применение пестицидов надо сочетать с агротехническими мероприятиями: регулированием микроклимата, обрывом листьев и фор­мированием растений.

Условия выращивания культур в теплицах разных хозяйств весьма раз­личны. Они разнятся даже в пределах одного хозяйства. Фитосанитарное

состояние зависит не только от типа теплицы и созданных в ней условий, но также и от набора вредителей, арсенала химических и биологических средств, наконец, от квалификации агрономов и рабочих теплиц.

БИОЛОГИЧЕСКИЙ МЕТОД

Условия закрытого грунта в наибольшей степени при­годны для применения биологических средств защиты растений. Этому спо­собствует ограниченность и замкнутость пространства, возможность регули­рования условий среды (температуры, влажности, освещенности и пр.) и соотношения полезных и вредных организмов.

11.5.1 БИОЛОГИЧЕСКИЕ МЕТОДЫ БОРЬБЫ С ВРЕДИТЕЛЯМИ И БОЛЕЗНЯМИ

Работа крупных тепличных комбинатов в течение года практически исключает возможность уничтожения в период зимних холодов устойчивых к пестицидам популяций вредителей и одновременно снижает эф­фективность профилактических мероприятий, проводимых по окончании ве­гетации растений. В результате специалисты вынуждены увеличивать крат­ность обработок растений акарицидами, инсектицидами и фунгицидами, а нередко и норму расхода препарата. Это приводит к накоплению остатков пестицидов и их токсических метаболитов в почве, растениях и плодах, резко­му ухудшению условий труда рабочих в теплицах. Поэтому естественен боль­шой интерес, проявляемый к биологическим средствам защиты растений.

Достаточно эффективными оказались энтомофаги и акарифаги, бакте­риальные и грибные препараты против всех наиболее серьезных вредителей и болезней овощных культур, встречающихся в период их вегетации в тепли­цах. Даже на существующем уровне методики их массового размножения пригодны для накопления достаточного количества биологических средств в производственных биолабораториях при крупных тепличных хозяйствах.

В практике биологической защиты растений огурца от паутинного кле­ща в условиях защищенного грунта накоплен значительный опыт примене­ния хищного клеща фитосейулюса (hytoseiulus persimilis A.H.). Используют два способа выпуска фитосейулюса — локальный и массовый. Одним из решающих условий успешного применения локального способа колониза­ции фитосейулюса является своевременное выявление заселенных вредите­лем растений. Для этого каждые 7—10 дней проводят обследование теплиц. При обследовании учитывается процент поврежденных растений и степень их поврежденное™.

Выпуск хищного клеща фитосейулюса на заселенные вредителем расте­ния проводят в день их обнаружения. Фитосейулюса выпускают, расклады­вая листья или целые растения сои или другой культуры, на которой был накоплен хищник, в очаги вредителя (табл. П. 2; II.3).

Нормы выпуска хищника определяются визуально и зависят от степени поврежденное™ растений. Обычно на одно заселенное вредителем растение раскладывают по 1—6 листьев сои с фитосейулюсом (в среднем 10—60 хищни-

ков). В запущенные очаги хищника выпускают в большом количестве до 140 особей на 1 м² теплицы, обеспечивая исходное соотношение хищник/жертва 1: 10, 1: 20. Обычно фитосейулюс полностью уничтожает вредителя в течение 2—10 дней. После уничтожения вредителя фитосейулюс расселяется в поис­ках пищи, однако через 4—5 дней после подавления очагов паутинного клеща на листьях можно обнаружить личинки хищника, которые, в случае повтор­ного заселения растений вредителем, могут обеспечить защитный эффект.

В сильно заселенных вредителем теплицах норма выпуска достигает до 250 особей на 1 м².

У фитосейулюса хищничают взрослые самки и самцы, нимфы и дейто-нимфы. Одна самка фитосейулюса каждые сутки уничтожает в среднем 36 яиц, или 15—20 активных особей, или 5—6 самок паутинного клеща. Макси­мальная прожорливость хищника отмечается при температуре 25—30°С и относительной влажности воздуха ниже 60%, при 25—30% влажности яйца фитосейулюса погибают.

Установлено также, что применение фитосейулюса в сочетании с хими­ческими препаратами не желательно. Даже слаботоксичные хлорорганичес-кие и карбонатные соединения отличаются высокой токсичностью для фи­тосейулюса. Фунгициды (беномил, бордоская жидкость, коллоидная сера, каротан, морестан), которые применяются в исключительно экстремальных случаях, относятся к слабо- или среднетоксичной группе препаратов для фи­тосейулюса.

Высокоэффективен против паутинного клеща, а также тлей, минирующих мух и трипсов инсектоакарицид кишечно-контактного действия — фитоверм — 0,2% к.э. Действующим веществом "препарата является наличие природных авермектинов, продуцируемых почвенным грибом Streptomyces avermitilis (штамм ВНИИСХМ-54). Авермектины — это нейротоксины, которые, проникая в организм кишечным или контактным путем, специфически воздействуют на нервную систему насекомых. Препарат применяют в 0,2% концентрации. Мак­симальный эффект достигается на 10-й день после обработки. Продолжитель­ность защитного действия не менее 20 дней. Повторную обработку, по мере появления вредителя, необходимо проводить не раньше, чем через 14 дней.

В настоящее время в борьбе с белокрылкой широко применяют парази­тическое насекомое энкарзию (Enkarsia Formosa Gahan). Технология приме­нения энкарзии во многом сходна с колонизацией фитосейулюса при защи­те растений от паутинного клеща.

Важным условием успешного применения энкарзии является своевре­менное обнаружение очагов белокрылки и выпуск необходимого количества паразита. С этой целью необходимо систематически проводить сплошные обследования теплиц сразу же после посадки рассады огурца и томата на постоянное место. При проведении учета для обнаружения имаго вредителя растения можно легко встряхивать. При выявлении очагов вредителя расте­ния необходимо тщательно просмотреть и, обнаружив яйцекладку или личи­нок, провести учет численности на 5—10 растениях по диагонали участка,

обозначив растения этикеткой. При проведении учета численности яиц и личинок белокрылки желательно пользоваться лупой 4—7-ми кратного уве­личения. После проведения учета численности вредителя в выявленные оча­ги нужно выпустить энкарзию. Листья с черными (мумифицированными) личинками белокрылки, содержащими энкарзию, в необходимом количест­ве следует разложить на средние листья заселенного вредителем растения.

Учеты численности белокрылки нужно проводить минимум один раз в неделю. При увеличении численности вредителя выпуски паразита повторя­ют через 10—12 дней. Для успешной биологической защиты необходимо, чтобы 25% личинок белокрылки были заражены энкарзией в течение перво­го месяца после ее выпуска, 50% — через 2 месяца и 80% — через 3 месяца. Самки энкарзии откладывают яйца, притом только по одному, в тело личи­нок белокрылки второго, третьего и частично четвертого возрастов. Зара­женные энкарзией личинки белокрылки через определенное время погиба­ют, мумифицируются и приобретают характерный черный цвет.

Как и белокрылка, энкарзия дает несколько поколений в год. При тем­пературе 20°С и относительной влажности воздуха 70—90% продолжитель­ность развития одного поколения энкарзии составляет 20—25 дней, а про­должительность жизни имаго — 25—28 дней. Период яйцекладки продолжа­ется 19—21 день, одна самка при этих условиях может отложить 60—65 яиц. Эффективность паразита энкарзии в борьбе с белокрылкой достигается во всех случаях при своевременном выявлении очагов вредителя и выпуске соответствующей нормы паразита (табл. 11.4). Норму колонизации опреде­ляют, исходя из соотношения паразита и хищника 1: 5 (по имаго) для огур­ца, 1: 10 — для томата, или 5—10 особей на 1 м² теплицы. Выпуски повторя­ют через 10—15 дней, в зависимости от численности вредителя. Выпускают паразита, раскладывая листья с предварительно отсчитанными в нужном ко­личестве мумифицированными нимфами белокрылки.

Для борьбы с тепличной белокрылкой применяют также микробиологи­ческие препараты, изготовленные на основе спор грибов рода ашерсония и вертициллиума.

Ашерсония (Aschersonia) заражает личинки белокрылки 2-го и 3-го воз­растов и не активна против имаго. Споры гриба, прорастая, проникают в тело личинки. Признаки заболевания проявляются на 6—7 день, когда на теле личинки появляется экссудат в виде капли. Позднее на мертвой личинке развивается плотная выпуклая пустула округлой формы, размером 2—4 мм в диаметре. Цвет пустулы по мере развития меняется и становится характер­ным для данной культуры гриба. Многочисленные споры — конидии, разви­вающиеся на поверхности пустул, разносятся каплями росы, насекомыми, вызывая заражение новых личинок вредителя. Вследствие своих биологи­ческих особенностей ашерсония, внесенная в популяции белокрылки даже в небольших количествах, постепенно накапливается.

Наибольшую гибель личинок белокрылки вызывают грибы, выращен­ные на пивном жидком и агаризованном субстрате. С целью удешевления сырья и отказа от дефицитного агар-агара, для применения в производствен­ных условиях рекомендуется выращивать гриб на отходах ячменя, получен­ных от производства трихограммы.

Применяется ашерсония способом опрыскивания растений суспензией спор, полученной путем смыва их водой с готовой культуры. Для получения 1000 л готовой суспензии с оптимальной концентрацией (1 ■ 10⁷ спор в 1 мл суспензии) нужно нужно смыть их с 80—100 бутылок. Полученной суспензи­ей (1000 л) можно обрабатывать 0,5 га, т.е. на 1000 м² расходуется 200 л суспензии. Опрыскивания необходимо повторять через каждые 10—12 дней. Эффективность применения ашерсонии зависит от концентрации, т.е. титра водной суспензии, качественно проведенного опрыскивания, а также темпе­ратуры (не ниже 23—25°С) и относительной влажности воздуха (70—80%).

Из имеющихся 11 форм гриба ашерсонии наиболее эффективными ока­зались три формы: китайская, индийская и тринидадская и смесь этих трех форм. У всех трех форм получена высокая эффективность при опрыскива­нии растений суспензией, содержащей 8 - 10⁶ и 2-10⁷ спор в 1 мл, наиболь­шей эффективностью обладала смесь трех форм, что составило 94,5%.

Для более успешной борьбы с белокрылкой можно совмещать выпуски паразита энкарзии с обработками растений ашерсонией. При преобладании личинок белокрылки 1-го и 2-го возрастов необходимо растения обработать ашерсонией, а затем через 4—5 дней провести выпуск энкарзии из расчета 5 особей на одно растение. При преобладании личинок белокрылки 3-го и 4-го возрастов необходимо выпустить энкарзию, затем через 14—15 дней рас­тения следует обработать ашерсонией. Обработки биопрепаратом с последую­щими выпусками повторять через каждые 10—12 дней.

Гриб вертициллиум, в отличие от ашерсонии, поражает белокрылку в фазу яйца, личинки и взрослого насекомого.

Вертициллиум может развиваться в широком диапазоне температур от 5 до 32°С. При температурах выше 32°С рост мицелия гриба прекращается. Оптимальными условиями для развития мицелия гриба является температу­ра воздуха 22—26°С и относительная влажность воздуха 95—100%. Жизне­способность гриба сохраняется в течение 15 дней при температуре 5°С.

Опрыскивание проводят в вечерние часы. В теплице, где применяли вер­тициллиум, температура должна быть не ниже 25°С и относительная влаж­ность воздуха не ниже 95%.

Следует отметить, что вертициллиум в высокой степени вирулентен к паразиту белокрылки энкарзии, поэтому совместно их применять не жела­тельно.

В практических целях в борьбе с белокрылкой по растительным остаткам можно проводить дезинфекцию теплиц сернистым газом (сжигание 100 г серы на 1 м³).

В борьбе с тлями предлагается большой выбор биологических средств, однако борьба сними все же остается наиболее проблематичной. Овощевод­ство, а также цветоводство несут огромные убытки из-за потери урожайнос­ти. Эффективность биозащиты недостаточна из-за узкой специализации би­ологических средств, т.е. против разных видов нужны разные афидофаги. На разных овощных культурах против одних и тех же тлей некоторые биосред­ства дают разные результаты.

Более 60 видов тлей уничтожают личинки хищной галлицы афидимизы (Aphidoletes aphidimyza Rond.).

Взрослые галлицы активнее в сумеречные и ночные часы и нуждаются в дополнительном питании. Кормом для них является медвяная роса, выделя­емая тлями. Самка откладывает яйца на растении от 50 до 140 шт в колонии тлей, причем обладает высокой поисковой способностью, что имеет боль­шое значение при применении афидофага в борьбе с тлями в производст­венных теплицах.

Хищничают только личинки. Личинка при оптимальных условиях темпе­ратуры 25°С и относительной влажности воздуха 80—90% развивается 5—6 дней, куколки 10—12 дней, на развитие одного поколения требуется 17—20 дней. Эффективность применения зависит в основном от своевременного об­наружения очагов тли и выпуска хищника. При обнаружении единичных оча­гов вредителя (не более одного на каждые 100 м² площади теплицы и отсутс­твии крылатых самок в колонии тлей) раскладывают по 50—70 коконов в сред­нем на 1 м². Если очагов больше и обнаружены крылатые самки тли, норму выпуска галлицы увеличивают в 2—3 раза. При колонизации коконы разме­щают в нескольких местах теплицы, помещая их на увлажненную почву тор­фоперегнойных горшочков на высоте 30—50 см. Вместо коконов в очаг вреди­теля можно выпускать личинок в соотношении хищника и жертвы 1: 2, взрос­лые особи энтомофага выпускаются из расчета 1 самка на 25—30 тлей.

При защите растений огурца положительных результатов можно достичь лишь при многократных выпусках энтомофага. На многих видах тлей (в част­ности бахчевой и персиковой) хищничают личинки златоглазки обыкновен­ной (Chrysopa carnea Steph.). Личинки удлиненно-веретеновидной формы с тремя парами грудных ног. Их тело светло-желтого или темно-серого цвета, обычно с рисунком из темных полос. В своем развитии личинки имеют три возраста. Закончившая развитие личинка окукливается в шелковистом коко­не. Куколка свободная, открытая, зеленого цвета. Кокон довольно плотный, округлой формы белого или светло-серого цвета.

Отродившаяся личинка сразу же начинает питаться. Прожорливость ли­чинок по мере развития увеличивается, наибольшая она у личинок третьего возраста. Поисковая способность личинки златоглазки определяется также характером поверхности листьев растений, на которых обитает златоглазка. На сортах с сильноопушенной поверхностью листьев растений огурца эф­фективность личинок златоглазки значительно ниже по сравнению с сорта­ми, листья которых имеют гладкую поверхность, или на растениях некото­рых зеленных культур. Обычно личинки хищника предпочитают слабо осве­щенные места. Прожорливость личинок очень высокая. Одна личинка за весь период развития уничтожает 500—600 тлей.

В настоящее время для борьбы с тлями в теплицах златоглазку размно­жают в массовом количестве в производственных биолабораториях по мето­дике, разработанной ВНИИБ. При разведении златоглазки в качестве корма для личинок используют яйца зерновой моли, которые получают при три-хограммном производстве. К массовому размножению златоглазки присту­пают за 30—40 дней до ее применения против тлей в теплицах. Важным элементом технологии применения энтомофага служит систематическое об­следование теплиц с целью выявления очагов вредителя. Выпускают златог­лазку при численности вредителя 150—200 тлей на одно растение в соотно-

шении хищник-жертва 1:5. Энтомофага выпускают в фазу яйца или личи­нок второго возраста, стряхивая их с бумажных ячеистых вкладышей садка, где их выращивают. Если численность вредителя после выпуска златоглазки не снижается, проводят повторную колонизацию. В жаркие дни колониза­цию лучше выполнять вечером, при пасмурной погоде — в любое время суток. Высокие дневные температуры отрицательно воздействуют на поведе­ние личинок златоглазки, они мигрируют с растений и укрываются в пазухах листьев нижнего яруса. Надо отметить, что раскладка яиц в осенне-зимний период неэффективна, так как резкие колебания температуры воздуха приводят к задержке развития и гибели значительной части эмбрионов хищника.

При защите растений огурца от тлей положительных результатов можно добиться лишь при многократных выпусках златоглазки. Для защиты зелен­ных культур энтомофага применяют в фазу личинки второго возраста, в со­отношении хищник-жертва 1: 10, 1: 15, 1: 30, в зависимости от численнос­ти тлей. Кратности выпуска зависят от периода вегетации растений.

Большое значение в снижении численности персиковой тли имеет пара­зитическое насекомое афидиус (Aphidius africariae Hal.) из семейства афиди-ид. Применяют паразита в основном на сладком перце.

Продолжительность жизни имаго и плодовитость зависят от климати­ческих условий. Оптимальными условиями для паразита являются темпера­тура 25°С и относительная влажность воздуха 70—80% В этом случае, в при­сутствии персиковой тли, достигается максимальная плодовитость свыше 300 яиц, а продолжительность жизни составляет до 14 суток. При разведении афидиуса кормом служит не естественный хозяин — персиковая тля, а обык­новенная злаковая. Преимущество злаковой тли перед другими видами в том, что она не повреждает огурец, томат, зеленные и др. культуры, возделы­ваемые в защищенном грунте. Весь цикл размножения паразита от посева растений до сбора мумий завершается за 16—18 суток.

Выпускают паразита в очаги тлей в мумиях с растениями, на которых они развивались. Мумии раскладывают на верхние листья защищаемых рас­тений. Соотношение при выпуске должно составлять не менее одной самки паразита на 20—30 тлей. Выпускать афидиуса необходимо в течение 3—4 недель с еженедельным интервалом. При своевременном правильном при­менении паразита популяция вредителя может быть уничтожена полностью в течение 20—30 дней, при отсутствии тлей афидиус погибает.

Против бахчевой тли успешно применяются интродуцированные энтомо­фага — Lusiphlebus testaceipes Chiss и L. fabarum Marsck. С целью накопления лизифлебуса для массового выпуска в теплицы он хорошо сохраняется в холо­дильнике при температуре +5°С в течение 20 суток. При трехкратном приме­нении энтомофага в теплице в соотношении паразит-хозяин 1: 20 биологи­ческая эффективность составила 76%, при норме выпуска 1:10 — свыше 83%.

Положительные результаты получены при применении хищного клопа макролофуса (Macrolophus nubilis H. S.) из семейства клопов-слепняков, кото­рый способен эффективно уничтожать тлю, белокрылку, трипе зв и других вредителей. Макролофус является зоофитофагом. При наличии трипсов, тли и белокрылки одновременно в одной теплице клоп в первую очередь уничто-

жает белокрылку, затем тлю, трипсов. Если названные вредители отсутствуют, хищник может питаться также паутинными клещами. Эта особенность хищ­ника позволяет направлено использовать его в различных системах защиты растений. Например, при наличии в теплице белокрылки, тли и паутинного клеща, его выпуски можно совмещать с выпусками фитосейулюса.

Макролофус может развиваться более чем на 30-ти видах растений, наи­более подходящим является табак. Благоприятной является температура 25—27°С и относительная влажность воздуха 75—85%. Продолжительность эмбрио­нального развития составляет в среднем 20—22 дня, продолжительность жизни самок — 20—31 день, потенциальная плодовитость 140 яиц.

Суммарная продолжительность жизни и хищничество личинок и имаго клопа достигает 50—60 дней.

Хищничают все стадии развития личинок и взрослые особи клопа. От­мечено, что имаго сутки уничтожает столько белокрылки, сколько личинка клопа младших возрастов. За время развития одной генерации один клоп уничтожает 3225 яиц или 2390 личинок белокрылки. Естественный корм мож­но заменять яйцами зерновой моли (ситотроги). Сбор клопа и личинок с растений осуществляется с помощью эксгаустера или садка-ловушки. Пес­тициды токсичны для всех стадий развития энтомофага. Колонизацию в теп­лицы можно осуществлять до появления белокрылки и в очаги вредителей. Выпуск клопа целесообразно проводить из расчета 5 особей на 1 м² площа­ди, или 10—15 личинок на каждое растение-резервант.

Известно более 40 видов насекомых и клещей, которые являются хищ­никами или паразитами табачного трипса. К наиболее перспективным из них относится хищный клещ — амблисейус маккензи (Ambliseiys mckezie Sch. Et Pr.), которого используют в основном в защищенном грунте. Разводят клеща по методике, разработанной ВНИИФ.

Хищный образ жизни у амблисейуса ведут протонимфы, дейтонимфы и взрослые клещи. Самка хищника ежесуточно уничтожает более 7 личинок табачного трипса, иногда питается яйцами, выступающими на поверхность. Взрослыми особями вредителя амблисейус не питается.

Выпускают амблисейуса в количестве 2—5 самок на один лист или 2 самки на 100 см² листовой поверхности, также при соотношении хищник-жертва 1: 1 или 1: 2 выпускают хищника на каждое растение, на котором обнаружен трипе. Плодовитость самок при температуре 25°С составляет 2,7 яйца в сутки. На развитие хищника отрицательно влияет снижение темпера­туры. Численность уменьшается, что сказывается на его эффективности.

В борьбе с табачным трипсом используют микробиопрепарат мускардин-ных грибов (Beauveria bassiana Bals.). Технический препарат выпускается в ви­де порошка серого или кремового цвета с титром не менее 2 млрд спор на 1 г.

Растения, заселенные трипсом, обрабатывают двукратно 0,1%-ой суспен­зией боверина с титром 6 млрд спор в 1 г сухого порошка с интервалом 7 дней. При применении боверина необходимо учитывать, что эффективность его за­висит не только от качества препарата, но и от относительной влажности тем­пературы воздуха в теплице, где проводилась обработка. Для развития гриба необходима температура 20—25 °С и относительная влажность 80—95%,

Лук, зараженный трипсом, перед высадкой необходимо обработать тер-

мическим способом сухим или влажным. Сухое прогревание лука проводят при температуре 42—43°С в течение 2 суток, влажное при температуре 5°С — в течение 5 минут с последующим охлаждением холодной водой.

Важнейшее регулирующее значение в динамике численности паслено­вой мухи (Liriomiza solani Macg.) имеют паразиты Opius pallipes (Himenoptera, Braconidae), Digliphus isaca, Chrysocharis sp. (Himenoptera, Europhidae) и Dacnusa sibirica (Himenoptera, Braconidae).

Для развития энтомофага благоприятна температура в пределах 25°С, влаж­ность воздуха 60%. В этих условиях развитие генерации заканчивается за 14 дней, плодовитость составляет 68 яиц. Биологическая активность энтомофага реализуется при соотношении паразит-хозяин 1: 30 и составляет 76—80%. Тех­нология разведения разработана и находит широкое применение в теплицах.

Одним из эффективных паразитов минирующих мух считается внутрен­ний паразит Dacnuca sibirica Telenga. Дакнуза заражает все возрасты личинок вредителя. Развитие личинки куколки дакнузы проходит в пупарии минера. Зимует в фазе куколки.

Весь цикл развития при оптимальной температуре проходит за 16 суток. Взрослые особи живут в среднем 7,6 суток. Плодовитость дакнузы в среднем составляет 93,6 яйца на одну самку. Биологическая эффективность применения дакнузы в соотношении 1 самка паразита на 15 личинок равняется 61—72%.

Среди многочисленных эктопаразитов минирующих мух большое прак­тическое значение имеет Digliphus isacaea Walker. Это мелкое насекомое (1,2—2,8 мм) черного блестящего цвета, с узкими равномерно опущенными от основания до вершины крыльями.

Личинки диглифуса, отродившиеся от яиц, передвигаются к жертве (ли­чинка минера) и приступают к питанию. Завершив питание, личинки рас­ползаются и окукливаются прямо в мине. Отродившееся из куколки взрос­лое насекомое прогрызет эпидермис листа (мины) и выходит на поверхность. Весь предимагинальный период развития диглифус проходит в минере и составляет 16,6 суток. Взрослые особи диглифуса живут 2—3 месяца.

В теплице диглифуса выпускают в очаги размножения минера многок­ратно, с интервалом 7—10 дней в соотношении паразит-жертва 1: 10. Эта мера обеспечивает снижение численности минера до конца вегетации рас­тения.

Ассортимент биологических препаратов в борьбе с болезнями огурца и томата весьма незначителен.

Против бактериоза томата применяется биологический бактерицид и фун­гицид Фитолавин-300. Это порошок желто-серого цвета на основании анти­биотика фитобактериомицина. Высокоэффективен против корневых слизис­тых и сосудистых бактериозов, фузариозов, а также листовых бактериозов. Обладает местным системным действием, не фитотоксичен, не токсичен для энтомофагов и насекомых опылителей. Применяется для предпосевного за­мачивания семян в 0,2% рабочем растворе на 2 часа и для обработки расса­ды, начиная с фазы 1—3 настоящих листьев, 0,2% рабочим раствором с ин­тервалом 15 дней.

Биопрепарат, изготовленный на основе почвенного гриба — антагониста Trichoderma lignorum Harz., широко используется в теплицах против корне-

вых гнилей, стеблевой и серой гнили, аскохитоза. В борьбе с корневыми гнилями препарат вносят в почву или субстраты из минеральной ваты путем внесения споровой массы биопрепарата в 0,15—0,2% концентрации, обработ­ки вегетирующих растений проводят при начальном появлении заболевания. Биологические средства защиты растений нуждаются в контроле за их качеством. Энтомофаги должны быть жизнеспособными, о чем в определен­ной мере можно судить по внешнему виду и весу объектов. Приобретая эн-томо-акарифагов, надо уметь оценивать не только их качество, но и коли­чество в упаковке. Приведем некоторые рекомендации, облегчающие такую оценку:

— в 1 г очищенной энкарзии содержится 30 тысяч мумий с паразитами;

— 1 тысяча коконов галлицы имеет массу приблизительно 4 г;

— в 1 г мумий лизифлебуса или афидиуса содержится 4 тысячи особей.

Сложнее учитывать хищных клещей. Как правило, в этом случае прихо­дится доверять производителю. В стандартной трехлитровой банке с листья­ми сои может быть от нескольких до 30 тыс. особей хищника; в 1 мл отрубей по стандарту должно быть 50—60 особей амблисейуса, но может их там нахо­диться и 250 тысяч.

Однако содержание определенного количества хищника или паразита в упаковке не гарантирует хорошего качества. Так, например, если коконы галлицы пролежали в холодильнике больше недели, то их жизнеспособность заметно уменьшается. Можно видеть, как отродившиеся имаго погибают ря­дом с коконами.

Другой пример касается фитосейулюса. В упаковке (в банке или пакете) с ним допускается содержание некоторого количества паутинного клеща. Ранее разработанный стандарт допускал соотношение хищника и жертвы 1: 1. Но такое соотношение не всегда выдерживается и не всегда необходимо. Напри­мер, при профилактических выпусках фитосейулюса и паутинных клещей оно может быть 1: 20.

Приобретая биологические средства, следует учитывать также дальность транспортировки, температурный режим в пути и вид тары. Незначительные отклонения от рекомендованных режимов ведут к заметному изменению ко­личества доставляемого биоматериала.

11.5.2 ИСПОЛЬЗОВАНИЕ ЖЕЛТЫХ КЛЕЕВЫХ ЛОВУШЕК (ЖЛК)

Одним из наиболее опасных вредителей культур защи­щенного грунта является тепличная или оранжерейная белокрылка. Полнос­тью безопасным средством снижения численности белокрылки являются жел­тые клеевые ловушки (ЖЛК), которые могут быть использованы как в соче­тании с выпусками энкарзии, так самостоятельно.

По мере высыхания ловушек и чрезмерном накоплении вредителей кле­евые ловушки нужно заменять новыми, обеспечивая их "работоспособность" в течение всего периода использования.

Ловушки прикрепляются при помощи шпагата к элементам конструк­ции теплицы. Подвешенные свободно, "трепещущие" под воздействием воз-

душных потоков ловушки больше привлекают белокрылку, чем фиксиро­ванная жестко, в одном положении. При развешивании необходимо, чтобы нижняя комка ловушки располагалась примерно на уровне самых молодых листьев растений и на расстоянии 5—20 см от них.

В процессе вегетации растения по мере отрастания новых листьев пери­одически регулируют длину несущей бечевы ловушки для того, чтобы посто­янно поддерживать ее исходное положение по отношению к паре верхних самых молоды листьев.

В теплице, до обнаружения белокрылки, ловушки вывешивают только у дверей (4 у каждой двери), открывающихся фрамуг (по 1 штуке), в начале и в конце центральной дорожки (по одной штуке у растений первого и послед­него рядов).

После появления первых очагов вредителя у каждого заселенного расте­ния вывешивают по 2 ловушки. При распространении белокрылки по тепли­це до 1% растений и более ловушки размещают вдоль центральной дорожки, а также равномерно в шахматном порядке по всей остальной площади из расчета 5—8 ловушек на каждые 100 м² (500—800 ловушек на 1 га в зависи­мости от плотности популяции вредителя.

Использование клеевых ловушек позволяет значительно повысить эф­фективность применения энкарзии. При совместном применении энкарзии и ловушек в зимне-весенней культуре при поражении огурца белокрылкой было заселено вдвое меньше растений (в среднем 12%), чем при использова­нии только энкарзии (25% растений). В теплицах первого варианта числен­ность вредителей также была значительно ниже (среднее максимальное количество личинок вредителя составляло 10 на одно растение), чем в теп­лицах второго варианта (43 личинки на одно растение в среднем). В обоих случаях удалось успешно подавить размножение белокрылки полностью от­казаться от применения химических обработок против этого вредителя. Ис­пользование ловушек позволяет резко сократить потребность в энкарзии.

11.6 БОЛЕЗНИ ОГУРЦА И ТОМАТА 11.6.1 ВИРУСНЫЕ БОЛЕЗНИ ОГУРЦА

В связи со значительными изменениями в технологиях возделывания овощных культур, внедрением новых сортов, в том числе ино­странных, а также с расширением ареалов переносчиков вирусных заболева­ний замечена тенденция к увеличению вирусной патологии на овощных куль­турах. Приведем характеристику вирусных болезней, представляющих угро­зу культурам огурца и томата в защищенном грунте.

В мировой практике на огурцах отмечены такие вирусы, как Cucumber green mottle mosaic virus, Cucumber mosaic virus, Cucumber necrosis virus, Cu­cumber leaf spot, Watermelon mosaic virus, Zucchini yellow mosaic virus, Zuc­chini lethal chlorosis virus, Cucumber pale fruit (viroid) и др.

В тепличных хозяйствах Украины наиболее вредоносными вирусными болезнями являются зеленая крапчатая (возбудитель — Cucumber green mottle mosaic virus) и обыкновенная (возбудитель — Cucumber mosaic virus) мозаи­ки. Однако следует учитывать потенциальную опасность всех вышеперечис­ленных заболеваний.