Лоточный аппарат конструкции Садова и Коханской

Моросильная камера Войнаровича. Применяется для инкубации мелкой и клейкой икры (судака, леща, сазана) во влажной среде. Эта камера представляет собой помещение размером 5 х 2,5 х 2,5 м с хорошей вентиляцией. Для создания необходимой влажности по обеим его боковым стенкам уложены водопроводные трубы, в которых через каждые 30 – 50 см вмонтированы водораспылители. Пол имеет уклон к центру камеры, где устроен водоспуск. В середине камеры установлены поперечные стойки длиной 1,5 и высотой 1,6 – 1,8 м, на которые вешаются гнезда с оплодотворенной икрой. Вдоль стен камеры оставлен проход шириной 0,5 м. В зависимости от вида икры и условий инкубации водораспылители работают непрерывно или через определенные промежутки времени. За несколько часов до начала вылупления предличинок гнезда с икрой на стадии вращающегося эмбриона снимают со стоек и переносят в заполненные водой желоба, ванны или прямо в водоем, где происходит ее доинкубация. Одновременно можно инкубировать до 20 млн. икринок судака. Расход воды небольшой. Каждый распылитель пропускает около 20 л воды в час. Вода выходит из распылителей под давлением 0,5 – 2,5 атмосфер. Для снабжения моросильной камеры водой можно использовать водопровод или насос с двигателем в 0,5 – 1,0 л.с. При таком методе инкубации икры требуется небольшое количество воды, которое можно при необходимости очистить, подогреть или охладить.

Аппарат Ющенко для нереста и инкубации икры полупроходных рыб. Изготавливается из бетона, пластмассы и досок. При использовании досок аппарат с внутренней стороны обивают полиэтиленовой пленкой. Представляет собой трехсекционную прямоугольную емкость общей площадью 15 м². Параметры каждой секции 2,5 х 2,0 х 0,5 м.

Аппарат имеет верхние и нижние сливные лотки, нижние лотки снабжены пробками. У противоположной лоткам стенки на кронштейнах подвешены ковши-волнообразователи (по одному в каждой секции). Ковши снабжены регуляторами наклона, позволяющими изменять емкость ковша, от которой зависит величина ванны. Вода поступает по трубопроводу в каждый ковш отдельно. Вставные перегородки делят аппарат на три секции.

Перед посадкой производителей на нерест на дно аппарата укладывают субстрат – капроновый коврик из хамсоросовой дели, натянутый не металлические рамки размером 50 х 50 см (гнездо). В одну секцию помещают 12 рамок с искусственным субстратом для судака. Это связано с тем, что судак откладывает икру кучно, в несколько слоев. Икра занимает в центре гнезда круг диаметром 25 – 40 см, поэтому гнезда для судака устраивают, оставляя между ними свободное пространство.

Лещ и сазан выметывают икру на значительно большую площадь и не так кучно, как судак. Поэтому для леща и сазана гнезда в аппарате размещают вплотную.

Выбор режима инкубации в зависимости от видовых адаптаций

Во время инкубации должны быть обеспечены необходимые условия для развития эмбриона. Основанием для разработки режима инкубации служат температура, содержание кислорода и углекислого газа, рН, освещенность и т. д. У разных рыб сроки инкубации различаются. У рыб, нерестящихся весной (карповые) эмбриогенез протекает в короткий срок. У лососевых развитие эмбриона начинается осенью, а заканчивается весной. В течение периода инкубации требования эмбриона к внешней среде меняются. Возрастает потребность в кислороде. Необходимо обеспечить условия инкубации, близкие к оптимальным.

Загрузка икры в аппараты должна производиться из учета ее количества. Перегрузка инкубационных аппаратов повышает отход икры и увеличивает процент уродств.

Чувствительность эмбрионов к факторам внешней среды, изменение ее в онтогенезе. Факторы, влияющие на процесс инкубации икры, и возможности их регулирования. Аномальное развитие эмбрионов и причины отхода икры во время инкубации.

Температура. Один из наиболее сильных по своему воздействию факторов. Оптимальные температуры развития можно определить, оценивая интенсивность обменных процессов по изменению потребления кислорода. Минимальное потребление кислорода за определенную стадию развития будет соответствовать оптимальной температуре. В п р оцессе развития температура для весенне-нерестующихся рыб повышается, для осенне-нерестующихся понижается. Определение оптимальных температур позволяет влиять на скорость развития эмбрионов, степень их сформированности и размеры. Так, удалось сократить сроки инкубации атлантического лосося с 80 – 200 до 45 суток и получить жизнеспособных личинок.

Кислород. Для разных видов рыб существуют свои диапазоны концентрации кислорода, при которых возможно развитие икры и вылупление предличинок. Чем ближе содержание кислорода к оптимальному, тем выше скорость развития.

При пониженных концентрациях кислорода наиболее типичные аномалии выражаются в деформациях тела и непропорциональном развитии и даже отсутствии отдельных органов, появлении кровоизлияний, образовании водянок на теле и желточном мешке.

При повышенных концентрациях кислорода наблюдается резкое ослабление и даже полное подавление эритроцитарного кроветворения. Прекращается мышечная моторика, утрачивается способность реагировать на внешние раздражители и освобождаться из оболочек.

Углекислый газ. Развитие эмбрионов рыб возможно в широком диапазоне концентраций углекислого газа. Как значительно увеличение, так и снижение содержания углекислого газа оказывает отрицательное влияние на развитие эмбрионов рыб. Роль углекислого газа многообразна. Его присутствие усиливает мышечную моторику, он облегчает диссоциацию оксигемоглобина, что обеспечивает необходимое напряжение кислорода в тканях. Кроме того, углекислый газ может повторно включаться в органические соединения тела.

Аммиак. У костистых рыб является основным продуктом азотистого обмена. Действие аммиака на эмбрионы лососевых вызывает у них ряд нарушений в развитии – водянка, кровоизлияния, снижение двигательной активности и темпа роста.

Водородный показатель (рН). Оптимальный диапазон 6,5 – 7,5.

Перед подачей в инкубационные аппараты вода должна быть очищена.

Воздействие ионов цинка и меди снижает жизнестойкость эмбрионов, угнетающе влияет на их рост и развитие. Именно поэтому на развитие эмбрионов может отрицательно влиять латунная сетка. Опасна также свежая древесина. Воздействие веществ, выделяемых при нахождении ее в воде, приводит к водянке и аномалиям в развитии различных органов.

Проточность. Необходима для развития эмбрионов. Если проточность недостаточна, эмбрионы испытывают недостаток кислорода. Эффективный водообмен создается током воды в инкубационных аппаратах. Перед вылуплением расход воды увеличивают с целью обеспечения нормального газообмена и удаления продуктов метаболизма.

Соленость. Возможность выращивания проходных рыб (лососевых) в соленой воде с начала их развития. Небольшая соленость (3 – 7 промилле) губительна для патогенных бактерий, грибков и оказывает благоприятное воздействие на рыб. Эмбрионы атлантического лосося и микижи выдерживают 6 – 7 промилле в начале инкубации и 10 – 13 промилле в конце, перед вылуплением. При солености 6 – 7 промилле выживает даже перезревшая икра.

Влияние света. Эмбрионы разных видов рыб по-разному реагируют на свет. Для эмбрионов лососевых свет губителен. Инкубация икры осетровых при полной темноте приводит к задержке развития. Но воздействие прямого солнечного света действует угнетающе.

Повышение жизнестойкости эмбрионов. Жизнестойкость эмбрионов может быть повышенаприменением кротонолактона. Этот препарат обладает бактерицидным свойствами, повышает устойчивость к болезням, увеличивает выживаемость. Для повышения выживаемости икры ее могут обработать после осеменения растворами антиоксидантов – этоксихин, бутилированный окситолуол, нифлекс-Д, гидрохинон, гваяколовая кислота.

Витамин Е – естественный антиоксидант и витамины группы В нормализируют многие физиологические процессы. При обработке икры лососевых рыб перед вылуплением раствором витамина В₁₂ не только жизнестойкость личинок, но и их устойчивость к токсинам.

Для повышения жизнестойкости используют нейропептиды. Препарат даларгин при использовании в рыбоводстве увеличивает выживаемость икры и личинок до 69 %, ускоряет темп роста.

Для борьбы с сапролегниозом применяют ультрафиолетовое излучение. В последние годы хорошо зарекомендовала себя обработка лазером. Она приводит к ускорению и синхронизации эмбриогенеза, повышает выживаемость, предотвращает развитие сапролегнии.

6. Уход за икрой во время инкубации. Перед началом инкубации необходима дезинфекция инкубационного цеха и инкубационных аппаратов. Перед загрузкой икры в инкубационные аппараты рекомендована ее профилактическая обработка – формалин 0,5 %, поваренная соль, йодсодержащие препараты. Уход за икрой включает в себя наблюдение за температурой, концентрацией кислорода, углекислого газа, рН, проточностью, уровнем воды, световым режимом, состоянием эмбрионов, отборе мертвой икры, профилактических обработках по мере необходимости.

При заилении икры проводят душевание. Его надо проводить в периоды пониженной чувствительности.

7. Продолжительность и особенности инкубации икры различных видов рыб. Продолжительность развития эмбрионов зависит от температуры. С повышением температуры скорость развития ускоряется, причем неравномерно. При низких температурах, близких к температурному минимуму, повышение температуры значительно ускоряет развитие. В зоне средненерестовых температур изменение скорости развития с повышением температуры происходит более постепенно и плавно, а при приближении к температурному максимуму скорость развития возрастает все меньше.

У разных видов рыб скорости развития разные. При низких температурах быстрее развиваются холодолюбивые рыбы, при высоких – наоборот, теплолюбивые.