Отчет по ветеринарной микробиологии и микологии

По учебной практике

 

Дата	Содержание выполненной работы, основные данные и их анализ	Замечания и предложения
15.07.19	Ознакомление с местом прохождения практики по ветеринарной микробиологии и микологии, разъяснение целей, задач, содержания практики и формой отчетности. Инструктаж по технике безопасности в микробиологической лаборатории.	-
16.07.19	Правила отбора, транспортировки и хранения патматериала. Подготовка посуды, материалов, оборудования и помещения лаборатории для работы.	-
17.07.19	Приготовление питательных сред, их разливка и стерилизация.	-
18.07.19	Санитарно бактериологическое исследование воздуха.	-
19.07.19	Учет результатов санитарно бактериологического исследования воздуха. Изучение свойств выделенных культур микроорганизмов (культуральных). Ознакомление с устройством Вивария, лабораторными животными, условиями их содержания и кормления, постановкой и учетом биологической пробы.	-
20.07.19	Обработка и анализ полученной информации, написание отчета.	-
22.07.19	Ознакомление с местом прохождения практики по физиологии, разъяснение целей, задач, содержания практики и формой отчетности. Техника безопасности при работе с животными. Ознакомительная лекция.	-
23.07.19	Наблюдение за приемом корма и воды животными Исследование кишечника у животных.	-
24.07.19	Исследование сердечного толчка животных Аускультация и перкуссия сердца. Исследование пульса у животных. Определение кровяного давление у кота. Функциональные пробы сердца	-
25.07.19	Изучение характера дыхания в зависимости от продуктивности, возраста и физиологического состояния животных. Определение числа дыхательных движений у животных. Аускультация и перкуссия легких. Измерение температуры тела у животного.	-
26.07.19	Знакомство с поведенческими реакциями животного: половыми, пищевыми, оборонительными, исследовательскими.	-
27.07.19	Обработка и анализ полученной информации, написание отчета.	-

 

 

Отчет по учебной практике

Введение

Учебная практика  на 2 курсе в 4 семестре по ветеринарной микробиологии и микологии проходила на кафедре инфекционных и паразитарных болезней имени академика РАСХН Ю.Ф. Петрова, а по физиологии и этология животных на кафедре морфологии, физиологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия имени Д.К. Беляева».

Практика является одной из частей учебно – воспитательного процесса. Она служит своеобразной формой осуществления связи теории с практикой. Благодаря ей происходит расширение, и закрепление полученных ранее теоретических знаний, а так же является основой для выработки навыков профессиональной деятельности.

 

Приложение

Отчет по физиологии и этологии животных.

Исследования проводились на собаке по кличке Фаер Харт, возраст 5 лет, порода Йоркширский терьер – мини.

 

Физиология пищеварения

Работа 1. Наблюдение за приемом корма и воды мелкими домашними животными

Исследуемым животным скармливают корм и наблюдают за приемом пищи. Отмечают время поедания корма, подсчитывают количество жевательных движений. Затем поят животных водой, делают те же измерения. Наблюдают за положением головы, гортани и мышц.

Результаты

Животное	Корм и вода	Время поедания	Кол-во жевательных движений	Количество глотательных движений	Наблюдения за животным
Собака	ProPlan сухой	10 мин	5-6 движений	20-24	Животное захватывает корм, немного раздрабливает его и производит акт глотания

Физиология кровообращения

Физиология дыхания

Терморегуляция

Физиология размножения

Исследования не проводились

 

Физиология лактации

Исследования не проводились.

Изучение анализаторов

Изучение рефлексов

Заключение

В ходе учебной практики по ветеринарной микробиологии и микологии, а так же по физиологии и этологии животных я освоила основные навыки, научилась на практике применять приобретённые в течении семестра теоретические знания, полученные в ходе изучения данных дисциплин.

Во время практики по ветеринарной микробиологии и микологии я:

1. Наглядно ознакомилась с устройством и оборудованием микробиологической лаборатории.

2. Повторила и закрепила  во время прохождения практики знания о техники отбора, взятия и фиксации патологического материала для микробиологического исследования, а также знания о транспортировке и хранении проб.

3. Ознакомилась с методами стерилизации лабораторной посуды.

4. Изучила технику приготовления питательных сред.

5. Ознакомилась с методами проведения исследования воздуха в различных помещениях.

6. Изучила культуральные свойства выделенных культур микроорганизмов.

7. Ознакомилась с правилами содержания, кормления лабораторных животных.

Во время практики по физиологии и этологии животных:

1. Закрепила знания о протекании различных физиологических процессов в организме животного.

2. Провела исследования состояния животного различными методами обследования и сравнила показатели данного животного с нормами. Сделала соответствующие выводы о его здоровье.

3. Научилась фиксировать животное.

4. Изучила формирование основных поведенческих реакций животного.

Таким образом, приобретенный во время практики опыт будет являться основой для формирования дальнейших навыков, а также я смогу применять практические умения в дальнейшем обучении.

 

 

По учебной практике

 

Дата	Содержание выполненной работы, основные данные и их анализ	Замечания и предложения
15.07.19	Ознакомление с местом прохождения практики по ветеринарной микробиологии и микологии, разъяснение целей, задач, содержания практики и формой отчетности. Инструктаж по технике безопасности в микробиологической лаборатории.	-
16.07.19	Правила отбора, транспортировки и хранения патматериала. Подготовка посуды, материалов, оборудования и помещения лаборатории для работы.	-
17.07.19	Приготовление питательных сред, их разливка и стерилизация.	-
18.07.19	Санитарно бактериологическое исследование воздуха.	-
19.07.19	Учет результатов санитарно бактериологического исследования воздуха. Изучение свойств выделенных культур микроорганизмов (культуральных). Ознакомление с устройством Вивария, лабораторными животными, условиями их содержания и кормления, постановкой и учетом биологической пробы.	-
20.07.19	Обработка и анализ полученной информации, написание отчета.	-
22.07.19	Ознакомление с местом прохождения практики по физиологии, разъяснение целей, задач, содержания практики и формой отчетности. Техника безопасности при работе с животными. Ознакомительная лекция.	-
23.07.19	Наблюдение за приемом корма и воды животными Исследование кишечника у животных.	-
24.07.19	Исследование сердечного толчка животных Аускультация и перкуссия сердца. Исследование пульса у животных. Определение кровяного давление у кота. Функциональные пробы сердца	-
25.07.19	Изучение характера дыхания в зависимости от продуктивности, возраста и физиологического состояния животных. Определение числа дыхательных движений у животных. Аускультация и перкуссия легких. Измерение температуры тела у животного.	-
26.07.19	Знакомство с поведенческими реакциями животного: половыми, пищевыми, оборонительными, исследовательскими.	-
27.07.19	Обработка и анализ полученной информации, написание отчета.	-

 

 

Отчет по учебной практике

Введение

Учебная практика  на 2 курсе в 4 семестре по ветеринарной микробиологии и микологии проходила на кафедре инфекционных и паразитарных болезней имени академика РАСХН Ю.Ф. Петрова, а по физиологии и этология животных на кафедре морфологии, физиологии и ветеринарно-санитарной экспертизы ФГБОУ ВО «Ивановская государственная сельскохозяйственная академия имени Д.К. Беляева».

Практика является одной из частей учебно – воспитательного процесса. Она служит своеобразной формой осуществления связи теории с практикой. Благодаря ей происходит расширение, и закрепление полученных ранее теоретических знаний, а так же является основой для выработки навыков профессиональной деятельности.

 

Отчет по ветеринарной микробиологии и микологии

 

Ознакомление с местом практики

Местом практики по ветеринарной микробиологии и микологии является кафедра инфекционных и паразитарных болезней имени академика РАСХН Ю.Ф. Петрова, находящаяся на 4 этаже главного корпуса академии. По кафедре была проведена экскурсия. Кафедра состоит из автоклавной-средоварочной, моечной с сухожарным шкафом, лаборатории с термостатами и боксом. Автоклавная - средоварочная предназначена для варки питательных сред, их стерилизации, а так же стерилизации отработанного материала и посуды. В ней присутствует варочная панель, весы, автоклав, полки с питательными средами. Моечная представляет собой комнату для промывки лабораторной посуды. В ней находится 2 раковины, бойлер, дистиллятор. Посуду моют в специальном растворе ершиками. На входе в моечную стоит сухожаровой шкаф. Он предназначен для стерилизации лабораторной посуды.

 

Большое значение для успешной работы имеет правильная организация рабочего места микробиолога.

Лабораторный стол должен быть хорошо освещен солнечным или искусственным светом. За каждой группой студентов закрепляется постоянное рабочее место.

В зависимости от темы занятия рабочее место оснащается необходимыми материалами и оборудованием: спиртовкой; штативом под пробирки; бактериологической петлей или препаровальной иглой; набором красок и реактивов для окраски препаратов; микроскопом; лотком с рельсами для размещения предметных стекол при окраске препаратов; промывалкой или колбой с водой и трубкой (для промывки окрашенных препаратов); предметными и покровными стеклами; флаконом с иммерсионным маслом; фильтровальной бумагой; марлей, карандашом или маркером по стеклу. Для микробиологических исследований необходима различная стеклянная посуда. Чашки Петри (диаметр 10 см, высота 1,5 см) применяют для выделения чистых культур, количественного учета микроорганизмов, анализа качественного состава микрофлоры на плотных питательных средах и других исследований; пробирки биологические – для хранения чистых культур и проведения микробиологических исследований; пастеровские пипетки с оттянутым капилляром. Кроме специальной посуды широко используют обычную химическую посуду: колбы плоскодонные конические Эйлер Мейера, круглодонные, мерные, пипетки, градуированные на 1 мл, пипетки Мора, мензурки, мерные цилиндры, бюксы, склянки и т.д. Колбы и пробирки, используемые для приготовления и стерилизации питательных сред и выращивания микроорганизмов, закрывают ватно-марлевыми пробками, которые изготовляют вручную или при помощи специальной машины.

 Правильно изготовленная пробка для пробирок должна: иметь длину 3-4 см, умеренно туго входить в пробирку, быть плотной и не менять своей формы при многократном применении. Инвентарь. В микробиологической практике применяют петли, иглы, пинцеты, ножницы, пластмассовые и металлические штативы для пробирок, металлические лотки и др. Петли и иглы изготовляют из платиновой, никелевой или хромоникелевой проволоки и закрепляют в металлическом петледержателе.

Техника безопасности в микробиологической лаборатории:

· К работе в учебной микробиологической лаборатории допускаются лица после прохождения инструктажа по технике безопасности.

· Не входить в микробиологическую лабораторию в верхней одежде.

· К занятию допускаются студенты только при наличии медицинского халата.

· В микробиологическую лабораторию запрещено вносить пищу, питьевую воду, посторонние вещи. В лаборатории запрещается курить и принимать пищу.

· При работе с микроорганизмами соблюдать осторожность и придерживаться приемов, исключающих возможность инфицирования.

· Если микроорганизмы случайно попали на стол, следует немедленно удалить их тампоном, смоченным дезраствором. При работе с жидкой культурой пользоваться спецсредствами для забора микроорганизмов.

· Не зажигать одну спиртовку от другой. Закрывать фитиль спиртовки колпачком между использованиями.

· Соблюдать меры безопасности при обращении с электроприборами. Перед работой проверить исправность электрооборудования. Без разрешения преподавателя не включать электроприборы в сеть.

Техника отбора, взятия и фиксации патологического материала для микробиологического исследования

Для вирусологических исследований желательно направлять пробы от животных в трех стадиях болезни:

· от свежих трупов (кровь, кости, лимфоузел и паренхиматозные органы, труп целиком, если животное мелкое);

· от убитых животных (кровь, кость, лимфоузлы, пораженные органы или их кусочки, срезы тканей);

· от живых животных (кровь, лимфа, промывы полых органов, слизь, истечения, секреты, экскреты, синовиальная жидкость, абортированный плод).

Пробы необходимо брать асептически, не допуская их загрязнения, в стерильные флаконы (обычно из-под антибиотиков). Каждую пробу необходимо брать в отдельный флакон. Масса каждой пробы должна быть достаточной для исследования — не менее 5—10 мл, или грамм. Все флаконы должны герметически закрываться пробками (обычно резиновыми), продезинфицированы снаружи, высушены и маркированы. Надписи необходимо делать простым карандашом с указанием вида и номера животного, названия органа и даты взятия материала. Дополнительные данные, относящиеся к анамнезу, заболеваемости, размеру очага или вспышки, симптоматике, применявшимся вакцинам, препаратам и т. п., отражают в специальной карте или сопроводительном письме. Лучшие условия для сохранения проб материалов — замораживание. Для пересылки образцы должны быть помещены в термосы со льдом или изотермические ящики, приспособленные для пересылки. Если образцы можно доставить в лабораторию в течение суток после отбора, то их не замораживают и не консервируют. Образцы, которые не могут быть доставлена в лабораторию в течение суток или в замороженном виде, необходимо консервировать глицерином. Он должен полностью покрывать кусочки взятых органов. Даже консервированные образцы желательно хранить в холодильнике. Успешная и точная диагностика зависит от быстроты доставки материалов в лабораторию. При вспышках заболеваний со значительной массовостью или смертностью из близко расположенных к лаборатории районов кроме образцов материала желательно присылать больных животных или свежие трупы. Их также необходимо доставлять с предосторожностями (упаковывать в ящики или коробки) во избежание разноса инфекции. Образцы материалов от трупов должны быть отобраны в возможно короткие сроки после смерти животного, чтобы сохранить возможности для выделения возбудителя, вызывающего заболевание. В тропическом и субтропическом климате при повышенных температуре и относительной влажности воздуха время от гибели до отбора проб не должно быть более 12 ч.

Взятие проб крови от переболевших животных. Пробы крови берут из яремной вены у крупного и мелкого рогатого скота, лошадей, из хвостовой артерии у свиней и из подкрыльцовой вены у птиц. Кровь можно брать из ушной вены. Перед взятием крови необходимо очистить и продезинфицировать кожу в месте укола или разреза. Каждую иглу или лезвие можно использовать только для одного взятия пробы.

Отбор проб костей. От мелкого животного можно отрезать небольшой кусочек ребра или трубчатой кости, предварительно освободив их от мышечной и хрящевой тканей от крупных животных можно наскоблить ножом или скальпелем ткань красного мозга из любой трубчатой кости, лопатки, позвонков, грудных концов ребер. Для этого нужно обнажить суставную поверхность, срезать хрящ и концом ножа или скальпеля, вращая их, наскрести и поместить во флакон необходимое количество (5—10 г) костно-мозговой ткани. Целую кость, освобожденную от мышц, посылают в герметически заклеенном пластиковом мешке.

Отбор проб при заболеваниях с поражением эпителиальных покровов (везикулярные поражения). При заболеваниях, которые вызывают поражение эпителиальных покровов, образование язв и абсцессов (ящур, везикулярный стоматит, оспа, бугорчатка и др.), от живых животных берут пробы крови и эпителий с участков поражения. От павших или убитых животных посылают образцы крови, лимфоузлов, кости и кусочков кожи на границе здоровых и пораженных участков. Правила отбора, консервирования, и пересылки образцов остаются такими же.

Отбор секрета слюнных желез. Имеет смысл брать при наличии признаков поражения ротовой полости или слюнных желез. Вытекающую изо рта слюну можно собрать прямо в пробирку. Если ее выделяется мало или она не вытекает, необходимо пропитать слюной стерильный тампон из ваты на палочке, а затем поместить в пробирку с небольшим количеством физиологического раствора и закрыть резиновой пробкой. Для усиления слюноотделения животному можно ввести пилокарпин из расчета 0,02–0,05 г на 1 кг массы.

Мочу собирают при помощи катетера в стерильную посуду.

Фекалии берут из прямой кишки шпателем или палочкой и помещают в стерильную пробирку или пенициллиновый флакон.

Везикулярную жидкость можно собрать шприцем или пастеровской пипеткой в стерильную пробирку. Стенки афт, корочки с поверхности кожи снимают пинцетом.