Методы индивидуального дозиметрического контроля

Индивидуальный дозиметрический контроль (ИДК) осуществляется с целью обеспечения безопасности человека во всех условиях воздействия на него ионизирующих излучений. Этот контроль заключается в том, что систематически измеряют дозу, полученную каждым работником в отдельности, за определенный промежуток времени ( день, неделя и т.д.). Осуществляется этот контроль с помощью небольших приборов карманного типа – индивидуальных дозиметров.

Индивидуальный дозиметрический фото контроль (ИФК)

Этот метод применяют для контроля безопасности при работе с рентгеновским и гамма-излучением. Дозиметрический фото контроль основан на свойстве ионизирующего излучения создавать скрытое изображение в фотоэмульсии, которая после проявления и фиксации приводит к почернению пленки. Степень почернения пленки пропорциональна дозе облучения. В зависимости от дозы излучения применяют пленки различной чувствительности. В комплект дозиметра ИФК входят: кассеты для пленок, кюветы для проявки, промывки и фиксации пленок, рамки для пленок и денситометр для измерения оптической плотности почернения пленок.

Методика ИФК основана на сравнении оптической плотности почернения облученных (рабочих) пленок с контрольными, которые облучены известной дозой гамма-излучения.

В качестве детектора используется дозиметрическая пленка, помещенная в светонепроницаемую кассету, которую помещают в чехол от пластика и пристегивают к одежде.

 

Индивидуальный фото контроль нейтронов (ИФКН)

Это модификация обычного ИФК. Этот метод применяют где при работе используются нейтроны (например- обогащение урана). Модификация заключается в следующем – впереди дозиметрической (рентгеновской) пленки помещается экран, состоящий из сульфита цинка и борного ангидрида. При попадании нейтрона в борный ангидрид из него вылетает Альфа-частица, которая попадая на сульфит цинка вызывает вспышку видимого света, что приводит к засвечиванию пленки.

 

Индивидуальный люминесцентный контроль (ИЛК)

Индивидуальны люминесцентный дозиметр служит для дозиметрического контроля лиц, работающих с Гамма-излучениями, а также при аварийных работах, так как диапазон измерений от 0,005 до 1000 рентген.

Работа дозиметра основана на использовании вспышечных криссталлофосфоров в виде таблеток - диаметром 16 мм и толщиной 1,5 мм, запаянных в стеклянную оболочку. Эти фосфоры обладают свойством накапливать энергию возбуждения под действием излучения, пропорционально дозе облучения, достаточно длительно сохранять ее, а затем быстро высвечивать при дополнительном освещении таблеток инфракрасным светом. По яркости вспышки фосфора судят о величине дозы облучения, полученной таблеткой, следовательно, и человеком носившем ее. Эти фосфоры могу возбуждаться и видимым светом, поэтому таблетки упаковываются в светонепроницаемые кассеты. Величина вспышек фосфора регистрируется фотометром с измерительной схемой, чувствительным элементом которого является фотоэлектронный умножитель.

Методы определения радиоактивности препаратов.

Подготовка проб для определения радиоактивности

Для определения средней пробы присланный материал тщательно перемешивают. Пробы мяса и овощей измельчают ножом или на мясорубке, сено и солому – ножницами. В связи с небольшой концентрацией радиоизотопов в пробе необходимо провести концентрирование. Концентрирование жидких проб проводят путем выпаривания с последующим сжиганием и озолением, а твердые пробы высушивают, сжигают и озоляют. Фарфоровые чашки, предназначенные для озоления проб, тщательно моют, высушивают, нумеруют, прокаливают в муфельных печах до постоянной массы, затем охлаждают в эксикаторах и взвешивают, записывая их массу. В эти чашки помещают навески материала от средней пробы необходимой массы или объема. Молоко, мясо и пр. выпаривают и обугливают (сжигают).

Сжигание проводят на электрической плитке или на газовой горелке, не допуская горение проб пламенем. Обугливание (сжигание) считается законченным по прекращению отхождения дыма.

Озоление проб проводят в муфельных печах при температуре 400-450 градусов. Чашки с обугленным материалом ставят для озоления в охлажденные или слегка нагретые печи (т.к. возможно спекание пробы), а затем повышают температуру. Озоление считается законченным, когда зола приобретает белый или серо-белый цвет в зависимости от материала пробы.

После некоторого остывания озоленные пробы переносят в эксикатор, охлаждают до комнатной температуры и взвешивают. Вычитая из общей массы чашки с золой массу чашки, определяют массу полученной золы. Рассчитывают коэффициент озоления (коэффициент зольности) пробы, который используют для пересчета активности на 1 кг объекта исследования.

Для твердых проб коэффициент озоления М рассчитывают по формуле:

М=m₂/m_1,

где m₁- масса взятой сырой навески для озоления в граммах;

m₂ - масса полученной золы в граммах.

Для жидких проб (молоко, вода) используют формулу:

М= m₂/m₁*10³

где m₁ - объем пробы воды или молока в литрах;

m₂ – масса полученной золы в граммах.

Готовую золу растирают до мелкого порошка, затем отвешивают на стандартной алюминиевой подложке 200 или 300 мг, тщательно разравнивают, уплотняют через кальку и проводят радиометрию. При радиометрии радиоактивных препаратов на радиометрических установках получают скорость счета, выраженную в импульсах в минуту (имп/мин), которую нельзя принять за активность, т.к. она выражает только часть радиоактивных распадов, зарегистрированных счетной установкой. Для определения истинной радиоактивности препарата в расп/мин или в единицах Кюри можно применить три метода: сравнительный (относительный), расчетный и абсолютный.

 

Относительный метод определения активности

Относительный метод основан на сравнении скорости счета от препарата с известной активностью (эталона) со скоростью счета от препарата (измеряемой пробы) неизвестной активности, полученных в абсолютно одинаковых условиях измерения. Скорость счета в имп/мин не тождественна активности (расп/мин), но пропорционально ей как в отношении эталона, так и измеряемой пробы. Эту пропорциональность можно выразить уравнением:

А_эт : N_{0 эт} = А_пр : N_{0 пр}

где А_эт и А_пр - активность эталона и пробы;

N_{0 эт} и N_{0 пр} – скорость счета от эталона и пробы.

Из этого уравнения можно определить активность пробы:

А_пр = А_эт * N_{0 пр} / N_{0 эт}

Относительный метод достаточно простой и достоверный при соблюдении двух условий (правил): выбор соответствующего эталона и проведение измерений в одинаковых условиях.

Препарат, применяемый в качестве эталона, должен отвечать следующим требованиям: вид излучения должен быть таким же, как и в исследуемой пробе, энергия излучения эталона и пробы должны быть одинаковой или близкой, схема распада изотопов в эталоне и в препарате не должна существенно отличаться. Лучшим эталоном считается препарат, содержащий тот же изотоп, который находится в исследуемой пробе.

Скорость счета от эталона и препарата измеряют в строго одинаковых условиях: на одном и том же приборе, с одним и тем же детектором, на подложках из одного и того же материала одинаковой толщины и размера, на одном и том же расстоянии от счетчика. Идентичность условий радиометрии эталона и препарата позволяет рассчитать активность без внесения поправочных коэффициентов на потери излучения при измерении.

Радиационная экспертиза объектов ветеринарного надзора

 

Контроль степени радиационного загрязнения объектов внешней среды (корма, вода, зернофураж и т.д.) и продуктов животноводства (мясо, молоко яйца и т.д.) осуществляет ветеринарная радиологическая служба.

Задачи экспертизы:

1. Определить допустимость кормового использования растений и растительных продуктов для животных, а также пищевого использования продуктов животного происхождения.

2. Выявить радиационную ситуацию, т.е. степень радиационного загрязнения данной местности, ее источники в обследуемом районе.

Для постоянного наблюдения радиологическим отделом вет.бак. лабораторий назначается от 3 и более пунктов. Если пункты в области примерно одинаковые по рельефу, климатическим условиям, то можно ограничиться 3 пунктами. Если имеются резкие отличия- то больше.

При выборе пунктов их необходимо согласовать с гидрометеослужбой, т.к. они проводят наблюдения за осадками, водными ресурсами, и медиками, т.к. они исследуют пищевые продукты.

Отбор проб.

Для отбора проб определяют конкретные пункты (хозяйства, фермы, поля и т.д.), наиболее отражающие характеристику данного района. Отбирают усредненную пробу, которая образуется при отборе нескольких порций материала в различных участках и объединения их в одну. В дальнейшем, после взвешивания, исследуется как одна проба.

Траву следует отбирать срезанием или скашиванием на расстоянии не менее 200 м. от дорог. Её срезают на трёх участках, расположенных по треугольнику и отстоящих друг от друга на 100 м.

Пробы сена, соломы, мякины, силоса, корнеклубнеплодов и концентратов берут при заготовке на зиму.

Воду берут из водоёмов в местах водопоя животных или забора её для этих целей. Если водоём глубокий, то беру две пробы: с поверхности и на глубине примерно 0,5 м. от дна. Пробы воды помещают в чистые стеклянные ёмкости. Чтобы понизить адсорбцию радиоизотопов на стекле, воду подкисляют азотной кислотой до слабокислой реакции.

Проба молока усредняется путем тщательного перемешивания общего удоя. Лучше брать парное либо сепарированное (где удалены сливки) молоко, т.к. в жирах, даже при загрязнении молока выше естественного уровня радиоактивности, радиоизотопы не выявляются. При транспортировке молока посуду обмывают соляной или азотной кислотой для снижения адсорбции на стенки.

Мясо берут из не жирной части туши и одну и ту же группу мышц. Это позволяет сопоставить результаты при исследовании мяса различных видов, возрастов, пород животных. Чтобы не снижать товарный вид можно брать мышцы шеи (место зареза) и конечностей.

Из костей лучше брать последнее ребро.

При отборе мяса птицы, при небольшом весе – 3-4 тушки.

Рыбу берут или целыми экземплярами (при массе до 0,5 кг). От крупной рыбы берут куски из средней части, но обязательно голову и плавники.

Яйцо берут из одного птичника от кур, содержащихся на одинаковом рационе и в одинаковых условиях – 3-4 десятка. При анализе яйца его разделяют на скорлупу и содержимое.

При отправке проб скоропортящихся продуктов их рекомендуется консервировать 5% раствором формалина. Каждую пробу нумеруют и составляют опись, которую прикладывают к сопроводительной в лабораторию. Кроме этого на взятые пробы составляют акт в 2-х экземплярах.

Поступившие пробы исследуются с помощью полевых приборов на общий радиационный фон. Если проба имеет повышение над общим радиационным фоном, то её измельчают и исследуют экспресс методом. Если превышения нет, то проба подвергается обработке (концентрированию) до золы. Затем определяется суммарная бета-активность, которая отражает удельную радиоактивность объектов ветнадзора. Это позволяет быстро получить ориентировочные сведения о степени радиоактивности исследуемой пробы. Для выяснения изотопного состава радионуклидов проводят радиохимический анализ. Все проведенные исследования заносятся в специальный формуляр радиометрического исследования.

Предубойный осмотр, сортировка, убой животных.

Убой животных на мясо без ветеринарного осмотра и допуск в пищу мяса и мясопродуктов, не подвергшихся ветеринарно-санитарной экспертизе, запрещается.

При проведении предубойного осмотра животных, пораженных радиоактивными веществами, необходимо принимать меры предосторожности, т.к. при сильном радиоактивном загрязнении шерстного покрова животные могут стать источником заражения людей. При осмотре все животные подвергаются дозиметрии и термометрии. Животных, имеющих загрязнение кожного покрова, подвергают обработке (дезактивации) и повторному контролю. При клиническом исследовании животных особое внимание обращают на наличие ожогов поверхности тела, травматических повреждений, кровоизлияний на слизистых оболочках глаз, носа, рта, на наличие безшерстных участков или легкое выдергивание шерсти.

Возможность убоя на мясо животных определяют на основании прогнозирования тяжести лучевой болезни (полученной дозы) и от прогнозирования исхода болезни. Убой животных, находящихся в зоне радиоактивного заражения и имеющих внутреннее заражение «молодыми» продуктами деления, целесообразно производить через 12-14 дней после вывода их из зараженной зоны. В течение этого срока произойдет значительное уменьшение радиоактивности за счет естественного распада изотопов и выведение радиоактивных веществ из организма. При значительной степени внутреннего радиоактивного заражения для решения вопроса о допустимых и оптимальных сроках убоя можно прибегнуть к выборочному убою животных. Радиометрическое исследование мышечной ткани и костей позволит установить, какова степень радиоактивности туш. Это может послужить основой для определения рациональных сроках убоя остальных животных данной группы.

При тяжелой и крайне тяжелой степени поражения необходим проводить убой в первые 3-12 суток. При большом количестве скота убой ведут по очереди. В первые 3 дня при дозе более 750 рентген, меньше доза – позднее. Это целесообразно не только потому, что указанный срок приходится на скрытый период (нет клиники), но и меньше обсемененность мышц и паренхиматозных органов (из-за снижения естественной резистентности микробы из кишечника, ротовой и носовой полостей проникают внутрь организма).

Во всех случаях убою не подлежат животные с выраженными клиническими признаками, повышенной температурой тела и имеющих зараженность кожного покрова.

 

Правила убоя. Во всех случаях убоя животных, подвергшихся поражению радиоактивными изотопами должны строго соблюдаться меры безопасности лиц, производящих убой, и предотвращаться дополнительное заражение мяса радиоактивными веществами (с кожи, из кишечника). Убой животных и снятие шкур должны производить специально выделенные для этого люди, которые не допускаются к нутровке и разделке туш.

Ветеринарно-санитарная экспертиза туш и органов

 

Мясо животных, подвергшихся только внешнему облучению и убитых до появления признаков лучевой болезни или после клинического выздоровления, выпускается в пищу без ограничения, если оно отвечает другим санитарно-гигиеническим требованиям.

Вопрос об использовании мяса животных, подвергшихся воздействию светового излучения (лучевые ожоги) должен решаться в зависимости от площади ожога, состояния животного перед убоем, сроков убоя после поражения и результатов бактериологического исследования туш и органов. Если все в норме – выпускается без ограничения, при положительных результатах бак.исследования мясо и субпродукты считаются условно годными и подлежат обезвреживанию установленным порядком.

При попадании радиоактивных веществ внутрь организма, при проведении ветеринарно-санитарной экспертизы туш и органов животных обращают внимание на патолого-анатомические изменения. Во всех случаях, когда эти изменения сами по себе не влеку браковки туш, необходимо проводить бактериологическое исследование мяса с целью исключения возбудителей пищевых токсикоинфекций. Обязательно проводится радиометрия проб мяса, костей и внутренних органов. Если их зараженность не превышает допустимых норм, то туши выпускаются в пищу без ограничений. Если радиоактивная зараженность превышает допустимые нормы, то необходимо ее снизить.

Технология переработки продуктов животноводства зараженных радионуклидами

Не смотря на все усилия, в случае радиационной аварии на практике чаще всего оказывается не возможным добиться полного отсутствия загрязнения продукции животноводства радионуклидами. Большая часть достаточно эффективных приемов переработки животноводческой продукции в целях уменьшения содержания в ней радионуклидов относительно просты и традиционны.

Туши и органы, полученные от животных, пораженных радиоактивными веществами, подвергают радиометрии и в зависимости от ее результатов сортируют на две группы : 1) загрязненные не выше допустимых норм (по стронцию и цезию); 2) загрязненные выше допустимого уровня. Туши и органы 1 группы выпускают в соответствии с правилами ВСЭ, второй – отправляют на хранение и в переработку. Аналогично сортируют мясо, загрязненное радиоактивными веществами с поверхности. Мясо 2 группы обмывают теплой водой или срезают верхний загрязненный слой толщиной до 0,5 см и после дозиметрического контроля мясо выпускают в пищу или на хранение, а срезанный слой уничтожают.

Уменьшение концентрации радионуклидов в мясе происходит при его вываривании его в воде и удалении бульона (в бульон до 80%-90% цезия, но мало стронция). Стронций удаляют обвалкой.

Вымачивание мяса в насыщенном растворе поваренной соли (1:1) в течение суток с заменой раствора каждые 3-6 часов значительно ускоряет обмен цезия. Лучше йодированная соль – эффект на 12% больше. Интенсивности процесса дезактивации способствует предварительное промораживание мяса с последующим оттаиванием. Ускоряет процесс присутствие уксусной кислоты – 1%, аскорбиновой кислоты -1-2 гр/л. Мясо лучше измельчать на куски 5-10гр. Подобным же способом можно снизить концентрацию радионуклидов в мясе птицы, рыбе, плодовых телах грибов, картофеле. Сало необходимо перетапливать (до 95% цезия переходит в шкварку).

При загрязнении молока и молочных продуктов радионуклидами для снижения их концентрации чаще всего используют традиционные методы. Обычная переработка молока в кисломолочные продукты значительно снижают концентрацию радиоактивных веществ. Больше всего снижается концентрация радиоизотопов при переработке молока на масло. После сепарирования молока 85-90% цезия, стронция и йода остается в обрате. При переработке сливок в масло основное количество радионуклидов переходит в пахту и промывочную воду. Перетапливание масла практически полностью устраняет цезий и стронций. Переработка молока на сыры, творог, порошковое и сгущенное молоко позволяет уменьшить содержание в них относительно коротко живущих радионуклидов (йод, барий).

Дезактивация яиц, загрязненных снаружи производится тщательным промыванием их водой с мылом или поверхностно активными веществами. Яйца от птиц, находящихся на загрязненной территории или получавших радиоактивные вещества с кормом подвергают радиометрической экспертизе и, в случае повышенной радиоактивности оставляют на хранение для уменьшения активности.

Использование радиоактивных изотопов и излучений в народном хозяйстве

 

Современные достижения ядерной физики применяются в сельском хозяйстве в следующих основных направлениях:

1. Радионуклиды используются как индикаторы (меченые атомы) в исследовательских работах в области физиологии, биохимии, патологии растений и животных, а также в разработке методов диагностики заболеваний животных.

2. Ионизирующие излучения применяются в генетических исследованиях и селекций с/х растений, для стимуляции роста и развития растений и животных с целью повышения хозяйственно – полезных качеств, для борьбы с вредными насекомыми, для стерилизации, консервирования, обеззараживания и увеличения сроков хранения пищевых продуктов, сырья животного происхождения, биологических и фармакологических препаратов (вакцины, сыворотки, питательные среды и т.д.), хирургического шовного и перевязочного материалов, приборов и инструментов, которые не подлежат температурной и химической обработке.

 

Применение радиоактивных изотопов в качествеиндикаторов (меченых атомов)

 

Большие достижения в биологии и физиологии животных и растений неразрывно связаны с введением в исследование радио-индикаторного метода (меченых атомов), основанного на использовании химических соединений, в структуру которых включены в качестве метки радиоактивные элементы. В биологических исследованиях обычно применяют радиоактивные изотопы элементов, входящих в состав организма и участвующих в его обмене веществ - ³Н, ¹⁴С, ²⁴Na и другие.

До распада введенные в организм радиоактивные вещества ведут себя в биологических системах также, как их стабильные изотопы. Это позволяет проследить судьбу не только радиоактивных изотопов, но и различных меченых органических и неорганических соединений и контролировать превращение их в процессе обмена.

Достоинство метода радиоактивных индикаторов является его высокая чувствительность, что позволяет использовать в исследованиях очень малые количества меченого соединения, которые не могут оказать влияния и изменить нормальное течение жизненных процессов.

Важным достижением современной биохимии, полученным с помощью радиоактивных веществ, можно считать представление о постоянном динамическом состоянии обменных процессов в живом организме, о непрерывном распаде и синтезе. Характер обмена, его направленность часто зависит от преобладания процессов распада или синтеза. Так, при изучении злокачественных опухолей было выяснено, что рост их обусловлен не усиленным синтезом, а задержкой распада белковых веществ опухоли. Только благодаря радиоизотопным индикаторам удалось определить скорость обновления различных составных частей тканей и органов. Радио-индикаторный метод позволил выяснить особенности обмена и синтетической роли микрофлоры рубца и других отделов желудочно-кишечного тракта у жвачных животных.

Радиоизотопы позволили изучить обмен макро и микроэлементов без введения в рацион их избытка, то есть без нарушения естественного содержания изучаемых веществ в организме. Радиоактивный изотоп ³²Р был применен для выявления сроков созревания спермиев и перемещение их по половым путям самцов при различной половой нагрузке.

 

Использование ионизирующих излучений для стимуляции роста и изменения наследственности

Одним из направлений радиационно-биологической технологии является применение ионизирующих излучений для повышения урожайности и продуктивности.

Под влиянием ионизирующей радиации в определенных дозах обнаруживается стимуляция физиологических процессов у всех биологических объектов, начиная с одноклеточных и кончая высокоорганизованными растениями и животными.

Облучение семян с/хозяйственных растений в сравнительно небольших дозах стимулирует рост и развитие растений, увеличивает количество и улучшает качество урожая. Несколько большие дозы облучения задерживают рост и развитие растений.

Это свойство использовано в радиационном методе повышения сроков хранения картофеля и овощей. Еще большие дозы вызывают значительные изменения в потомстве облученных растений, появления большого количества разновидностей, измененных форм (мутаций). Мутации представляют большой интерес для дальнейшей селекции. На основе радиационного мутагенеза в растениеводстве успешно решаются вопросы получения высокоурожайных, устойчивых к неблагоприятным условиям среды и действию патогенных вредителей новых сортов сельхозрастений. Селекционеры почти в 5 раз сократили срок выведения новых сортов ячменя и пшеницы, используя мутагенный процесс гамма облучения.

Известно, что при малых дозах отмечается радио стимуляция и у животных, а лучевая болезнь не возникает. Радио стимуляция изучалась в скотоводстве, свиноводстве, птицеводстве и звероводстве. По данным некоторых ученых внешнее однократное рентгеновское или гамма облучение суточных поросят крупной белой породы в дозах 10-25 рентген вызывало у них выраженный стимулирующий эффект. В первые 3 месяца жизни масса тела у этих животных увеличивалась на 10-15% быстрее. При этом радио стимуляция не оказывала отрицательного влияния на органолептические и биохимические показатели мяса.

Лучевой воздействие в дозах 10-30 рентген повышает выживаемость и интенсивность роста у норок, повышает качество пушнины.

После облучения цыплят повышалась их выживаемость, наблюдался более интенсивный рост перьев, повышалась яйценоскость несушек. При облучении гамма излучением в дозе 5 рентген у низко продуктивных несушек яйценоскость повышалась на 22 %. Малые дозы облучения цыплят бройлеров в первые 6-12 часов их жизни увеличивают выход живой массы на 9,5 – 16,5%, а выход мяса первой категории на 31,3 -41,2%.

Большие дозы облучения у животных могут вызывать мутации, но они не всегда благоприятны, как в растениеводстве. Но все таки есть полезные разновидности. С помощью радио мутации удалось вывести новую разновидность тутового шелкопряда и была выведена новая порода норки с оригинальным серебристым цветом меха.

Применение ионизирующихизлучений для стерилизации

Использование ионизирующих излучений для обеззараживания различных препаратов и продуктов животноводства получила значительное развитие в нашей стране и за рубежом. На основе летального действия радиации в больших дозах успешно развивается радиационная (холодная) стерилизация материалов и препаратов медицинского и ветеринарного назначения.

Широкое использование сульфаниламидов и антибиотиков обуславливает важность стерилизации этих препаратов. Масштабы производства антибиотиков и их термолабильность заставили воспользоваться для стерилизации ионизующими излучениями. Сульфаниламиды, обладая высокой радиорезистентностью, без особой трудности подвергаются радиационной стерилизации.

Можно проводить стерилизацию радиационным способом гормонов, ферментов, витаминов. Гормоны обладают более высокой радиорезистентностью по сравнению с витаминами. Но витамины группы В обладают относительно высокой радиорезистентностью, особенно если их облучать в растворах. Из ферментов наиболее устойчивыми оказались протеолитические (трипсин, пепсин, инвертаза и другие). При стерилизации перечисленных препаратов радиоактивным способом они не снижают своей биологической активности и у них не изменяются химические свойства.

Радиационную стерилизацию применяют при изготовлении вакцин. Она позволяет проводить облучение вакцины в готовом расфасованном виде, не снижая их иммуногенных свойств, и делает вакцины мало токсичными.

Есть данные, указывающие на то, что радиационная стерилизация питательных сред не только не понижает питательных свойств, но даже в той или иной степени повышает их качество для некоторых видов микроорганизмов.

Исследования показали экономическую целесообразность применения ионизирующих излучений для обеззараживания сырья животного происхождения- шерсти, пушно-мехового и кожевенного сырья, неблагополучного по инфекционным болезням. Сочетание мокросоления и облучения сырья приводит к практически полной стерилизации.

Ионизирующее излучение используется для обработки пищевых продуктов и лучевого консервирования, а также для обеззараживания мясных туш при паразитарных поражениях (например- при трихинеллёзе). Это одобрено Всемирной организацией здравоохранения и Комиссией ООН по вопросам продовольствия и сельского хозяйства.

 

Использование радиоактивных изотопов и излучений в диагностике и терапии.

В биологии, медицине и ветеринарии получили развитие разработки методов in vitro радиоизотопных исследований и диагностики заболеваний человека и животных, при которых радионуклиды не вводятся в организм. Широкую известность получил радиоиммунологический метод анализа. Он позволяет быстро и надежно определять в биологических жидкостях и тканевых экстрактах содержание гормонов, ферментов, рецепторных белков, а также лекарственных препаратов. Особое достоинство этого метода- его высокая чувствительность. В этом методе сочетается специфичность,свойственная реакциям антиген – антитела, с чувствительностью и простотой, которые дает радиоактивная метка. Основой данного анализа является конкурентная реакция меченого или не меченого антигенов или антител за связь со специфическим антигеном или антителом. Меченого антитела или антигена берется постоянное количество. Результаты вычисляются по стандартной кривой. Этот анализ используется для количественного определения гормонов, ферментов и других биологически активных веществ, что позволяет характеризовать функциональный уровень эндокринной системы в зависимости от физиологического или патологического состояний, продуктивности, типа кормления и содержания.

Большого внимания заслуживает этот метод в диагностике бешенства. Метод основан на связывании меченых радионуклидом специфических антител рабическим антигеном в мазках-отпечатках мозга больных животных и измерений радиоактивности образовавшегося комплекса. Радиоиммунологический анализ позволяет с высокой надежностью проводить диагностику и других вирусов (ящура, ротовирусы), а также выявлять антигены и антитела к вирусу болезни ньюкасла и других.

Использование ионизирующих излучений с лечебной целью в основном сводится к применению их при злокачественных образований. В общем виде непосредственная задача лучевой терапии опухолей сводится к максимально быстрому подавлению роста опухоли. С позиции радиобиологии она может быть оптимально решена путем стерилизации раковой ткани, производимой без угрожающей жизни пациента повреждения нормальных тканей. Лучевая терапия балансирует между двумя наиболее опасными последствиями: возможностью рецидива опухоли при недостаточной дозе излучения и тяжелым повреждением нормальных тканей при превышении этой дозы. Под стерилизацией опухоли понимают подавление способности составляющих ее клеток к неограниченному размножению.

Величина стерилизующей дозы определяется размером опухоли и радиочувствительностью ее клеток. К настоящему времени количественно оценена радиочувствительность несколько десятков типов нормальных тканей и опухолей животных и человека. В среднем радиочувствительность опухолевых и нормальных клеток одинакова, а радиочувствительность клеток различных опухолей варьирует более чем вдвое.