Аварийные ситуации при заборе крови

Аварийные ситуации при заборе крови

В процедурном кабинете должна быть аптечка первой помощи при аварийной ситуации. В аптечку входят:

· спирт 70%;

· 5% спиртовая настойка йода;

· 20% раствор сульфацила натрия;

· навески марганцевокислого калия для приготовления 0,05% раствора (50 мг на 100 мл воды);

· бинт, лейкопластырь, напальчники, перчатки.

 

Повреждение кожных покровов инструментами, загрязненными биологическими жидкостями пациента. Алгоритм действий:

· снимите перчатки,

· обработайте 70% спиртом,

· вымойте руки под проточной водой с двукратным намыливанием,

· обработайте ранку 5% настойкой йода.

 

Попадание биологических жидкостей пациентов на слизистую глаз. Алгоритм действий:

· промойте под проточной водой,

· закапайте 20% раствор сульфацила натрия или промойте 0,05% раствором марганцевокислого калия, разведенного в пропорции 1: 10000.

ВНИМАНИЕ

Категорически запрещается тереть слизистые оболочки, загрязненные кровью

или другими биологическими жидкостями.

При попадании биологических жидкостей пациентов на слизистую носа. Алгоритм действий:

· промойте под проточной водой,

· промойте 0,05% раствором марганцевокислого калия;

Попадание биологических жидкостей пациентов на слизистую рта. Алгоритм действий:

· прополощите водой,

· прополощите 0,05% раствором марганцевокислого калия или 70% спиртом.

Попадание биологических жидкостей пациентов на неповрежденную кожу. Алгоритм действий:

· обработайте кожу 70% спиртом,

· вымойте руки под проточной водой с двукратным намыливанием,

· повторно обработайте 70% спиртом.

Повреждение пробирки с кровью во время работы центрифуги. Алгоритм действий:

· крышку открывайте медленно, не раньше, чем через 30 минут после полной остановки;

· все центрифужные стаканы и разбитое стекло поместите в дезраствор на один час. Используйте 3% раствор хлорамина, 0,1% раствор Жавелиона, 6% перекись водорода;

· внутреннюю и наружную поверхность центрифуги и крышки обработайте дезраствором двукратным протиранием с интервалом в 15 минут.

Повреждение емкости, разлив биологических субстратов. Алгоритм действий:

· используйте защитную одежду – перчатки, фартук, маску или щиток;

· ограничьте место аварии ветошью и залейте его на один час дезраствором, например, 0,1% раствором Жавелиона, 6% перекисью водорода;

· соберите разбитую емкость с помощью совка, выбросите;

· все поверхности на месте аварии вымойте водой.

 

Как проводить взятие крови: СОПы по работе с кровью

Чтобы медсестры не допускали нарушений при взятии крови, обучите их работать по алгоритмам. Мы подготовили инструкции для всех видов взятия крови у детей и взрослых. Пояснили, как предотвратить осложнения и действовать в аварийных ситуациях.

Как оборудовать процедурный кабинет

Выделите в кабинете асептическую, рабочую и хозяйственную зону и обеспечьте маршрутизацию чистого и «грязного» потоков. В кабинете должны быть: медицинский шкаф, рабочий стол, манипуляционный стол, два стула, стол с выдвижным ящиком для дезсредств. Мебель должна иметь влагостойкие поверхности, подлежащие дезинфекции.

В асептической зоне расположите медицинский шкаф со стерильными материалами и химическими препаратами. Стерильные материалы в упаковке храните на отдельной полке. Укладки со стерильным материалом и подготовленные для стерилизации укладки – в разных отделениях шкафа.

Все манипуляции пациенту выполняйте в рабочей зоне, там же заполняйте медицинскую документацию. На манипуляционном столе разместите штативы с пробирками для крови. Все медицинские документы расположите на рабочем столе.

В хозяйственной зоне расположите раковину с локтевым или кистевым управлением и тумбочку с дезинфицирующими средствами. На тумбочке должна быть емкость с дезинфицирующим раствором «Для дезинфекции поверхностей». В тумбочке храните трехдневный запас дезинфицирующего препарата, моющее и чистящее средства, чистую сухую ветошь, мерную посуду, перчатки для уборки помещения.

Как идентифицировать и подготовить пациента

Расскажите пациенту о предстоящей процедуре, чтобы снять у него возможное беспокойство и избежать стрессовой ситуации.

ВНИМАНИЕ

Виды игл

Стенка иглы для взятия крови ультратонкая. Это увеличивает ее внутренний просвет. Внешняя и внутренняя поверхности стенки иглы покрыты силиконом для меньшей травматизации пациента и улучшения свободного тока крови. V-образная лазерная заточка среза способствует безболезненному гладкому входу иглы в вену через кожу.

Со стороны острия для прокалывания пробирки игла снабжена резьбой и защитной резиновой мембраной. Иглы запечатывают в два пластиковых футляра и проклеивают этикеткой, чтобы предотвратить их повторное использование. Цветовая кодировка колпачков помогает в выборе диаметра иглы (таблица 2).

Таблица 2. Цветовая кодировка размеров игл в соответствии с ISO

Цвет	Диаметр иглы	G (калибровочный размер)
Желтый	0,30	30G
Красный	0,33	29G
Лазурный	0,36	28G
Светло-серый	0,40	27G
Коричневый	0,45	26G
Оранжевый	0,50	25G
Светло-фиолетовый	0,55	24G
Синий	0,60	23G
Черный	0,70	22G
Темно-зеленый	0,80	21G
Желтый	0,90	20G
Кремовый	1,10	19G
Розовый	1,20	18G
Алый	1,40	17G
Белый	1,60	16G
Серо-голубой	1,80	15G
Бледно-зеленый	2,10	14G
Пурпурный	2,40	13G
Голубой	2,70	12G
Желто-зеленый	3,00	11G
Оливково-коричневый	3,40	10G

Виды держателей игл

Держатели, или переходники, предназначены для безопасного и удобного введения иглы в вену и соединения иглы с пробиркой. Резьба держателя совпадает с резьбой иглы для взятия крови. Виды держателей – в таблице 3.

Таблица 3. Виды держателей игл в вакуумной системе

	Держатель для медицинских игл
	Держатель для игл с защитой иглы

ВНИМАНИЕ

ВНИМАНИЕ

Как брать кровь шприцем

Сбор крови с помощью шприца или иглы с большим просветом может спровоцировать гемолиз, тромбирование крови в просвете иглы, несоответствие объемов крови и консерванта. Сейчас его практически не используют, поскольку для взятия образцов на исследование оптимален вакуумный сбор. Если необходимо взять кровь с помощью шприца, действуйте по алгоритму:

Как брать кровь на химико-токсикологический анализ

Химико-токсикологическое исследование (ХТИ) проводят, если есть следующие признаки:

· повышенное слюноотделение;

· тошнота и позывы к рвоте;

· головная боль;

· чрезмерная сухость кожи;

· осложнение дыхания;

· озноб;

· повышенная температура.

Помимо этого пройти химико-токсикологическое исследование необходимо при: кожных болезнях; злокачественных опухолях; неврозах или депрессии; аллергии; регулярном приеме сильнодействующих ЛС; хронических патологиях печени и желудка.

Для определения уровня содержания наркотических, психотропных веществ, алкоголя и его суррогатов берите два образца самотеком или в вакуумную пробирку.

Первый способ. Самотеком в сухой флакон с раствором гепарина – 3-5 капель на каждые 10 мл крови.

Берете 15 мл крови в два флакона объемами 10 и 5 мл с гепарином. Флаконы закрывайте стандартной резиновой пробкой и фиксируйте ее алюминиевым колпачком. Содержимое флаконов надо сразу перемешать. Флакон с 5 мл крови храните как контрольный образец. Второй флакон с 10 мл крови – анализируемый образец – используйте для проведения ХТИ.

Второй способ. С использованием вакуумных пробирок с реагентом EDTA K2. Так же берите 15 мл крови в две пробирки.

Берите кровь для химико-токсикологического исследования по алгоритму:

 

 

 

 

 

 

Образцы для химико-токсикологических исследований на наличие алкоголя, наркотических, психотропных и других токсических веществ, вызывающих опьянение, надо доставить в лабораторию в течение двух суток после взятия. Кровь после сбора храните в холодильнике при температуре 0-2 °С. Перевозите образцы в сумках контейнерах. Перед транспортировкой старшая медсестра приемно-диагностического отделения (ПДО) должна проверить документацию и провести макроскопическую оценку биоматериала.

Биоматериал хранится два месяца со дня забора. Для хранения биоматериал передайте в кабинет старшей медсестры ПДО. В течение первых двух суток при температуре от 0 до +2 °С, далее – при температуре не выше минус 180 °С в запираемых или опечатываемых холодильных шкафах. В рабочие дни ответственный за соблюдение температурного режима хранения биологического материала – старшая медсестра ПДО. В выходные и праздничные дни – ответственная медсестра ПДО.

Невостребованные образцы передавайте в патологоанатомическое отделение для утилизации установленным способом как отходы класса Б. Отвечает за уничтожение биологического материала старшая медсестра ПДО.

Все биоматериалы регистрируйте в учетном журнале формы №450/у-06 «Журнал регистрации отбора биологических объектов».

Как брать капиллярную кровь

Брать капиллярную кровь стоит, если нет возможности взять кровь из вен:

· у новорожденных и детей первых месяцев жизни, особенно недоношенных;

· у пациентов с множественными ожогами или заболеваниями кожи;

· у пациентов с рассыпным типом вен или избыточной массой тела;

· у пациентов со склонностью к формированию тромбозов.

Брать образцы капиллярной крови могут сотрудники КДЛ в лаборатории или в лечебных отделениях стационаров. Получать дополнительный сертификат не надо.

Взятие крови у взрослых

Подготовьте манипуляционный стол к работе, условно разделив рабочую поверхность стола на «чистую» и «грязную» половины. На «чистой» половине поместите стерильные индивидуальные упаковки с капиллярами, ватными шариками, стерильные одноразовые скарификаторы, стерильные предметные часовые стекла либо одноразовые пробирки, чистые резиновые груши, перчатки, предметные стекла, емкость с 70% спиртом или другим разрешенным спиртовым кожным антисептиком.

На «грязной» половине – емкость для отходов класса Б, контейнеры «Для колющих и режущих инструментов» и «Для дезинфекции стекол» с дезинфицирующими препаратами в концентрации для инактивации вирусов гемоконтактных гепатитов.

Для сбора крови лаборант должен подготовить контейнер для транспортирования с тремя отделениями: чистым, рабочим и грязным. В чистом отделении должно быть необходимое количество стерильных укладок с ватными шариками, капиллярами, предметными часовыми стеклами или одноразовыми пробирками, чистыми перчатками. В рабочем отделении – чистые предметные стекла; груши; штативы с пробирками для определения СОЭ, содержания гемоглобина; мазки крови. В грязном отделении – контейнер «Для дезинфекции стекол», контейнер для отработанных скарификаторов.

ВНИМАНИЕ

ВНИМАНИЕ

ВНИМАНИЕ

Взятие крови у детей

Какие инструменты использовать. Используйте автоматические безопасные ланцеты – за счет специальной заточки колющей части они обеспечивают быстрый и практически безболезненный прокол на определенную глубину. Колющая часть ланцетов стерильна, заключена в пластиковый чехол с цветовой кодировкой, может быть в виде лезвия или иглы.

Системы для взятия капиллярной крови состоят из невакуумноймикропробирки с предварительно внесенными реагентами и капилляра или воронки. Микропробирки, также как и вакуумные пробирки для взятия венозной крови, имеют цветовую кодировку крышек в соответствии с внесенными реагентами и ISO 6710. Объем микропробирок может быть от 0,1 до 1 мл.

Как выбрать место прокола. Выбор места прокола и инструментария зависят от возраста ребенка и особенностей анатомического строения капиллярной сети (таблица 8).

Таблица 8. Рекомендации по выбору между проколом пальца и пяточным проколом

	Пяточный прокол	Прокол пальца
Возраст	С рождения до 6 месяцев	Старше 6 месяцев
Вес	Приблизительно от 3 до 10 кг	Более 10 кг
Расположение ланцета	На медиальной или латеральной подошвенной поверхности	Со стороны возвышения пальца перпендикулярно линиям отпечатка пальца
Глубина	2,4 мм (для недоношенных новорожденных – 0,85 мм)	Ребенок > 6 месяцев и < 8 лет – 1,5 мм Ребенок > 8 лет – 2,2 мм
Рекомендуемый палец	–	Средний или безымянный. Не используйте большой или указательный пальцы из-за затвердений и мизинец из-за слишком тонкой кожи.

В момент, когда делаете прокол, не сжимайте пятку или палец слишком сильно, чтобы не сделать прокол глубже необходимого и не травмировать ребенка.

При взятии капиллярной крови у детей реально получить до 500 мкл крови – этого достаточно для общего анализа и исследования основных биохимических показателей.

Капиллярную кровь у детей берите в соответствии с СОП «Пункция пятки» и по алгоритму взятия капиллярной крови из пальца у взрослых.

ВНИМАНИЕ

Как предотвратить гемолиз

Одна из проблем, препятствующая исследованию образца, которую можно предотвратить в процессе взятия крови, – гемолиз. Это нарушение целостности эритроцитов и последующее увеличение во внеклеточном пространстве концентрации внутриклеточных компонентов. Внутриклеточная концентрация некоторых клеточных компонентов в 10 раз выше их внеклеточной концентрации. Гемолиз может быть причиной увеличения концентрации калия, лактатдегидрогеназы, аспартатаминотрансферазы, магния. Гемолиз в пробе – критерий, по которому лаборатория отказывается принимать биоматериал на исследования. Это указано в п. 3.5.5 ГОСТ Р 53079.4–2008.

В пробирках с красной крышкой есть активатор сгустка, нейтральный для химического состава сыворотки. Активатор сгустка позволяет сократить время ожидания формирования сгустка в пробирке до 30 минут по сравнению с 60 минутами без активатора. После образования сгустка пробирку нужно центрифугировать.

Гемолиз можно определить по окрашиванию сыворотки крови в красноватый цвет после центрифугирования. Основные причины гемолиза указаны в таблице 9.

Таблица 9. Основные причины гемолиза

Возможная причина	Способ решения проблемы
Тонкая игла для венепункции	Используйте иглы диаметром 0,8 или 0,7 мм (21G и 22G соответственно)
Длительное сдавление вены (дольше 1 мин)	Контролируйте точное время наложения жгута (не более 1 мин)
Перенос крови в пробирку с помощью шприца	Используйте специальные двусторонние иглы для вакуумных пробирок и держатель или переходники
Интенсивное перемешивание образца	Аккуратно переверните пробирку 5–10 раз, не допуская образования пены, содержимое не должно стать мутным
Неадекватное заполнение объема пробирки	Контролируйте заполнение пробирки до черной метки (± 10%)
Неправильный выбор параметров центрифугирования	Правильно выбирайте тип ротора, адаптеров, скорость, относительную центробежную силу, время, температурный режим

Аварийные ситуации при заборе крови

В процедурном кабинете должна быть аптечка первой помощи при аварийной ситуации. В аптечку входят:

· спирт 70%;

· 5% спиртовая настойка йода;

· 20% раствор сульфацила натрия;

· навески марганцевокислого калия для приготовления 0,05% раствора (50 мг на 100 мл воды);

· бинт, лейкопластырь, напальчники, перчатки.

 

Повреждение кожных покровов инструментами, загрязненными биологическими жидкостями пациента. Алгоритм действий:

· снимите перчатки,

· обработайте 70% спиртом,

· вымойте руки под проточной водой с двукратным намыливанием,

· обработайте ранку 5% настойкой йода.

 

Попадание биологических жидкостей пациентов на слизистую глаз. Алгоритм действий:

· промойте под проточной водой,

· закапайте 20% раствор сульфацила натрия или промойте 0,05% раствором марганцевокислого калия, разведенного в пропорции 1: 10000.

ВНИМАНИЕ