Условия хранения и доставки.

Длительное хранение мочи при комнатной температуре до исследова­ния приводит к изменению физических свойств, разрушению клеток и размножению бактерий. Моча, собранная для общего анализа, может храниться не более 1,5—2 ч (ОБЯЗАТЕЛЬНО НА ХОЛОДУ!), примене­ние консервантов нежелательно, но допускается, если между мочеис­пусканием и исследованием проходит более 2 ч. Наиболее приемле­мый способ сохранения мочи — охлаждение (можно хранить в холо­дильнике, но НЕ ДОВОДИТЬ ДО ЗАМЕРЗАНИЯ!). При охлаждении не разрушаются форменные элементы, но возможно влияние на результа­ты определения относительной плотности.

Используемые консерванты.

При сборе суточной мочи добавляются консерванты — в первую пор­цию собираемой за сутки мочи.

· Тимол: наиболее используемый консервант для большинства пара­метров мочи (несколько кристаллов тимола на 100 мл мочи).

· Толуол: несколько мл толуола добавляют в сосуд с мочой так, чтобы он тонким слоем покрывал всю поверхность мочи; дает хороший бакте-риостатический эффект, не мешает химическим анализам, но вызывает легкую мутность.

· Борная кислота: 3—4 гранулы на 100 мл мочи, дает достаточный бактериостатический эффект.

· Ледяная уксусная кислота: 5 мл на все количество суточной мочи.

 

Примечания:

Мешающими факторами при исследовании многих химических ком­понентов мочи могут оказаться различные посторонние примеси (за­грязнение) — бактериальные или химические. Источники этих при­месей могут быть разные:

¨ в организме — интерференция лекарств (попадающие в мочу лекарства или их метаболиты могут мешать при химическом оп­ределении тех или иных компонентов в моче);

¨ во время мочеиспускания — возможно загрязнение мочи от ге­ниталий (при неправильном сборе мочи);

¨ после взятия мочи (недостаточно чистая посуда, неправильное хранение — размножение бактерий и т.д.).

Нельзя исследовать мочу:

· во время менструации или кровотечений из области гениталий;

· после проведения цистоскопии анализ мочи можно назначать не ранее, чем через 5—7 дней.

 

ОСОБЕННОСТИ ВЗЯТИЯ, ДОСТАВКИ И ХРАНЕНИЯ МОЧИ ДЛЯ ОПРЕДЕЛЕНИЯ ОТДЕЛЬНЫХ КОМПОНЕНТОВ

 

ПОДСЧЕТ ФОРМЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ В СУТОЧНОМ КОЛИЧЕСТВЕ МОЧИ

ПО МЕТОДУ КАКОВСКОГО—АДДИСА

Исследуемый материал. 1 Суточная моча.

2. Моча, собранная за 10—12 ч (нужно отметить, что этот вариант сбо­ра мочи значительно снижает точность результатов исследования).

Условия хранения: во время сбора хранить на холоду, в сосуд доба­вить консерванты: 4-5 капель формалина или 2-3 кристалла тимола.

Примечание. Больной в течение суток, предшествующих исследова­нию, должен получать мясную диету с ограничением количества жидко­сти, чтобы получить мочу кислой реакции и более высокой концентра­ции, так как нейтральная или щелочная реакция мочи, а также низкая относительная плотность могут привести к распаду форменных эле­ментов (особенно гиалиновых цилиндров).

 

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОЛИЧЕСТВА ФОРМЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ,

ЭКСКРЕТИРУЕМЫХ С МОЧОЙ ЗА 1 МИН ПО МЕТОДУ АМБУРЖЕ

Исследуемый материал: мочу собирают точно за 3 ч (180 мин), не­медленно направляют в лабораторию для исследования.

 

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОЛИЧЕСТВА ФОРМЕННЫХ ЭЛЕМЕНТОВ

В 1 МЛ МОЧИ ПО МЕТОДУ НЕЧИПОРЕНКО

Исследуемый материал: сбор утренней мочи проводят по методу "трехстаканной пробы"; в лабораторию доставляют среднюю пор­цию мочи.

 

ИССЛЕДОВАНИЕ МОЧИ НА КЛЕТКИ ШТЕРНГЕЙМЕРА—МАЛЬБИНА

Исследуемый материал: средняя порция утренней мочи, собранной по методу "трехстаканной" пробы (если нет других указаний).

 

ПРОБА ПО ЗИМНИЦКОМУ

Исследуемый материал: собирают за сутки 8 порций мочи: в 6 ч утра больной опорожняет мочевой пузырь (эта порция выливается). Затем, начиная с 9 ч утра, точно каждые 3 ч собирает 8 порций мочи в отдель­ные банки (до 6 ч утра следующего дня). На каждой банке отмечается время сбора мочи. Все порции доставляют в КДЛ, где измеряется ко­личество и относительная плотность каждой порции. Проба проводится при обычном питьевом режиме и питании больного, предварительной подготовки больного не требуется, но целесообразно предупредить больного о том, что желательно, чтобы количество жидкости в эти сутки не превышало 1,0—1,5 л.

 

 

Методика взятия (сбора) кала.

Взятие материала: сбор кала для исследования осуществляется са­мим пациентом в соответствии с инструкциями, которые должны быть составлены в лаборатории.

Время взятия: кал для исследования доставляется в лабораторию утром, желательно, чтобы с момента дефекации до исследования про­шло не более 12 ч (при условии правильного хранения — на холоду).

Так как на результаты исследования кала влияет характер пищи, а также прием лекарств, изменяющих перистальтику или цвет кала, то для получения достоверных и сравнимых результатов необходимо унифицировать условия подготовки больного и сбора материала.

Кал для исследования должен быть собран в чистую, сухую, широкогорлую посуду, желательно стеклянную (не следует собирать кал в баночки и флаконы с узким горлом, а также в коробочки, спичечные коробки, бумагу и т.д.).

Следует избегать примеси к испражнениям мочи, выделений из половых органов и других веществ, в том числе лекарств.

Если для какого-либо химического определения (например, уробилиногена) нужно точно знать количество выделенного кала, то посуду, в которую собирают испражнения, нужно предварительно взвесить.

Подготовка пациента

Перед исследованием кала отмечается прием медикаментов, влияю­щих на секреторные процессы, а также усиливающих перистальтику кишечника, и медикаментов, примеси которых в кале изменяют его цвет или мешают при микроскопическом или химическом исследовании. Это касается таких лекарств, как слабительные, ваго- и симпатикотропные средства, сульфат бария, препараты висмута, железа, каолин, рек­тальные свечи, приготовленные на жировой основе, ферментные пре­параты, Н₃-блокаторы и другие препараты, влияющие на процессы переваривания и всасывания.

Нельзя направлять кал на исследование после клизм, а также рент­генологического исследования желудка и кишечника (примесь бария). Исследование кала желательно проводить не ранее, чем через 2 сут после рентгенологического исследования.

При исследовании кала, основной целью которого является опре­деление функциональной способности пищеварительного тракта, т.е. степени усвоения пищевых веществ, необходимо в течение 4—5 дней соблюдать специальную унифицированную диету, содержащую уста­новленное количество различных пищевых продуктов. Можно исполь­зовать две диеты — Шмидта и Певзнера; диета Шмидта является ща­дящей, диета Певзнера представляет максимальную пищевую нагрузку для здорового человека.

Диета Шмидта: дневной рацион (распределяется на 5 приемов пищи): 1—1,5 л молока, 2—3 яйца всмятку, белый хлеб с маслом, 125 г рубленого мяса, 200 г картофельного пюре, овсяная каша; общая кало­рийность — 2250 кал.

Диета Певзнера: дневной рацион: 200 г белого и 200 г черного хле­ба, 250 г жареного мяса, 100 г масла, 40 г сахара, жареный картофель, морковь, салаты, квашеная капуста, гречневая и рисовая каши, компот, свежие фрукты; общая калорийность — 3250 кал.

При выборе диеты необходимо учитывать состояние органов пище­варения, а также привычный характер питания. Пробную диету дают в течение 4—5 дней, копрологическое исследование проводят троекрат­но: на 3-й, 4-й и 5-й день (при условии ежедневного самостоятельного опорожнения кишечника). При невозможности использовать указанные диеты достаточно обычной смешанной пищи, содержащей необходи­мые пищевые вещества в умеренном, но достаточном количестве.

Условия доставки и хранения материала. Кал должен быть достав­лен в лабораторию и исследован не позднее, чем через 8—12 ч после дефекации, хранить необходимо до исследования на холоду при тем­пературе 3—5°С (в холодильнике).

 

Особенности собирания и условий хранения кала для определе­ния отдельных показателей

Обнаружение крови: при исследовании кала с целью обнаружения скрытого кровотечения за 3 дня до анализа следует исключить из дие­ты мясо, рыбу, зеленые овощи, помидоры, а также лекарства, содер­жащие металлы (железо, медь), так как все эти вещества могут мешать в химических реакциях обнаружения крови.

Определение стеркобипиногена: для количественного определения стеркобилиногена кал обязательно должен быть свежевыделенным (исследуют не позднее 2 ч после дефекации), собран и доставлен в посуде темного стекла, необходимо защищать от действия света.

Обнаружение простейших (вегетативных форм): кал должен быть обязательно свежевыделенным — исследование необходимо прово­дить не позднее 15—20 мин после дефекации, т. е. еще в теплом со­стоянии; в остывшем кале вегетативные формы простейших быстро теряют подвижность и затем погибают. Цисты сохраняются значитель­но дольше, поэтому обнаружение цист можно проводить даже через несколько часов при условии сохранения кала в холодильнике (при температуре 3—5 °С), но не более 24 ч. Посуда для сбора кала должна быть чистой, сухой, без примеси воды и дезинфицирующих средств; необходимо избегать также примеси мочи и др. загрязнений (см. раз­делы "Методика взятия" и "Подготовка пациента").

Обнаружение гельминтов:

Для диагностики гельминтозов исследуют, кроме испражнений, соскобы с перианальных складок, дуоденальное содержимое, мочу, содержимое подногтевых пространств, мокроту, ректальную слизь и т.д.

Исследование кала на яйца гельминтов — составная часть "общего анализа кала", но может назначаться и как самостоятельное исследо­вание. Кал для исследования забирают из разных мест разовой порции (общее количество — 10—15 г). Кал должен быть менее суточной дав­ности, собранный в чистую стеклянную посуду. Для контроля за лече­нием направляют на исследование все порции фекалий, выделенные в дни приема антигельминтных средств, в лабораторию доставляются также и выделенные с испражнениями паразиты.

Соскоб с перианальных складок делают с помощью деревянного шпателя, смоченного в 50% растворе глицерина или 1% растворе со­ды.

Производят осторожно легкое соскабливание по всей окружности анального отверстия с поверхности перианальных складок, соскоб проводят утром до дефекации, у женщин — и до мочеиспускания. По­лученный материал снимают со шпателя краем покровного стекла и помещают в каплю 50% глицерина на предметном стекле, покрывают этим же покровным стеклом и микроскопируют.

Если соскоб производят не в лаборатории и полученный материал должен быть доставлен в лабораторию через более или менее дли­тельный интервал времени, например, при массовом обследовании, для удобства транспортировки можно использовать коробки и пузырьки от пенициллина: шпатель после соскабливания опускают в пенициллиновый пузырек с 2—3 каплями 50% раствора глицерина и ставят пузы­рек в ячейку коробки.

Соскоб с перианальных складок в амбулаторных условиях может проводить и сам больной: для этого используют ватный тампон в про­бирке (для взятия слизи из зева), в пробирку приливают 5 мл кипяченой воды, больной утром до вставания с постели ватным тампоном, слегка отжатым о стенки пробирки, обтирает перианальные складки вокруг ануса и вкладывает тампон обратно в пробирку, доставляет пробирку с тампоном в лабораторию.

Ректальный соскоб: шпатель (глазной или деревянный) вводят в анальное отверстие на 3 см глубиной, вращательными движениями соскабливают материал со стенки кишки, затем обрабатывают и иссле­дуют как соскоб с перианальных складок.

Соскоб из подногтевых пространств: ноготь смачивают раствором едкого натра (0,5—1%), затем маленькими ватными тампонами при помощи пинцета обтирают край ногтя и подногтевое пространство. Тампоны помещают в центрифужные пробирки и доставляют в лабора­торию. Материал также можно брать спичкой или деревянным шпате­лем, смоченным 50% раствором глицерина.

 

Методика взятия (сбора) мокроты и подготовка пациента:

Время взятия (сбора) мокроты: утром (8—9 ч утра), натощак.

Обычно собирают утреннюю порцию мокроты до приема пищи, по­лученную путем откашливания. Следует избегать попадания в образец слюны и секрета носоглотки или синусов. Мокроту собирают в чистую сухую широкогорлую склянку.

Предварительно больной должен прополоскать рот и глотку кипяче­ной водой и вычистить зубы. Если мокроту нельзя получить путем от­кашливания, то получают материал из бронхов (как для цитологическо­го исследования, см. раздел "Цитологические исследования").

Условия доставки и хранения. Желательно доставить в лабораторию и исследовать свежевыделенную мокроту как можно скорее, хотя для некоторых исследований (например, исследование на микобактерий туберкулеза) отсрочка не приносит большого вреда. При невозможно­сти немедленного исследования мокроту необходимо хранить в про­хладном месте, лучше — в холодильнике. Нецелесообразно собирать мокроту за большой промежуток времени (более суток), так как дли­тельное стояние приводит к размножению бактерий и аутолизу элемен­тов мокроты.

Примечание: для обеззараживания мокроты и посуды, в которой она хранилась, используют 5% раствор хлорамина.

 

ОСОБЕННОСТИ СБОРА И ХРАНЕНИЯ МОКРОТЫ ДЛЯ ОТДЕЛЬНЫХ ИССЛЕДОВАНИЙ:

 

ИССЛЕДОВАНИЕ МОКРОТЫ НА МИКОБАКТЕРИЙ ТУБЕРКУЛЕЗА:

Мокроту необходимо собирать в стерильную сухую посуду с крышкой. Больной должен избегать загрязнения мокротой наружных стенок бан­ки. Если мокрота выделяется в скудном количестве, следует дать от­харкивающее средство накануне сбора и утром, можно применять аэ­розольную ингаляцию, провоцирующую усиление секреции бронхов или использовать ингаляцию горячего солевого гипертонического раствора в течение 10—20 мин. Нужно следить за тем, чтобы не было передачи инфекции от одного больного другому при использовании распыляю­щего прибора.

Примечание: при необходимости транспортировки мокроты применяют консерванты: глицерин, трехзамещенный фосфорнокислый натрий и 2% раствор борной кислоты.

См. также раздел "Микробиологические исследования".

 

Методика взятия (сбора) спинномозговой жидкости

Взятие материала, спинномозговую жидкость получают путем люмбальной пункции, которую проводит врач-клиницист. Люмбальную пункцию производят между остистыми отростками III и IV или IV и V пояс­ничных позвонков. Для проведения пункции укладывают больного на бок, при этом ноги должны быть согнуты в коленях и притянуты к живо­ту, чтобы обеспечить согнутое положение позвоночника.

Чтобы найти место пункции, проводят линию (тампоном, смоченным йодом), соединяющую высшие точки гребней подвздошных костей (ли­ния Якоби). Эта линия обычно пересекает остистый отросток IV пояс­ничного позвонка (верхний край V поясничного позвонка). Кожу тща­тельно дезинфицируют, вводят иглу с мандреном. Когда игла достигает подпаутинного пространства (расстояние от поверхности кожи до кана­ла 6—7 см), мандрен вынимают и собирают вытекающую жидкость. Количество жидкости, извлекаемой без вреда для больного, — 8—10 мл. Место пункции закрывают стерильным материалом, больного ос­тавляют в положении лежа на спине без подушки в течение 1 сут.

Условия доставки и хранения материала: в лабораторию ликвор должен быть доставлен немедленно после пункции в стерильных про­бирках, закрытых стерильными ватными пробками Для предотвраще­ния образования сгустка фибрина взятие необходимо проводить с ЭДТА.

Рекомендуемое для исследования количество ликвора — 10 мл, ко­торое лучше доставлять в лабораторию в двух пробирках (для химиче­ского и микроскопического исследования). Наличие примеси крови должно быть обязательно отмечено

Подсчет клеток в камере и приготовление осадка необходимо вы­полнять В ТЕЧЕНИЕ 30 МИН ПОСЛЕ ПУНКЦИИ!

При невозможности немедленного исследования хранить при тем­пературе 2—8°С (лучше в пластиковой, а не стеклянной пробирке):

· для подсчета клеток в камере — не более 1 ч,

· для определения лактата — 3 ч (нативный ликвор) и 1 ч (с ЭДТА),

· для определения глюкозы — 3 дня,

· для определения белка — до 6 дней.

Примечание повторную пункцию больному рекомендуется проводить не ранее, чем через неделю

 

Методика взятия желудочного сока и подготовка пациента

Взятие желудочного содержимого проводит медицинская сестра Время взятия. 8—9 ч утра

Подготовка пациента. Накануне и в день зондирования пациент не должен курить. Отменяются все медикаменты за 24 ч до зондирования (особенно влияющие на желудочную секрецию — антациды, атропин, кофеин, седативные и др.). Зондирование проводится натощак после 14 – часового голодания (никакой пищи за этот период). Перед зонди­рованием необходимо вынуть съемные зубные протезы.

Желудочное содержимое извлекают путем зондирования желудка. С диагностической целью зонди­рование желудка проводят фракционным способом с помощью тонкого зонда, представляющего собой тонкую резиновую трубку длиной 110— 150 см, с диаметром просвета 2—3 мм, с закругленным желудочным концом (без оливы) с двумя отверстиями на нем. Зонд имеет 2 метки: на расстоянии 50 и 70 см соответственно от закругленного конца. Вве­дение тонкого зонда производится при активном участии пациента. Зонд вводят обычно в положении больного сидя, конец зонда помеща­ют в глубине глотки на корень языка, при этом больной должен глубоко дышать и неторопливо глотать, больной не должен запрокидывать голову, а стараться наклонить ее кпереди. У лиц с повышенным рвот­ным рефлексом зонд может быть введен через нос или после анесте­зии корня языка и зева (например, смазывание раствором новокаина).

Введение зонда до первой метки свидетельствует о нахождении конца его в области дна желудка, а продвижение до второй метки — о нахождении в области привратника желудка.

Необходимым условием полного извлечения желудочного содержи­мого является расположение конца зонда в дистальном отделе желуд­ка, т. е. примерно на глубине 55—65 см от края зубов, для ориентиро­вочного расчета можно пользоваться следующей рекомендацией: вво­дить зонд на глубину, равную росту больного в сантиметрах минус 100. В случае необходимости положение зонда можно проконтролировать рентгенологически.

На наружный конец зонда надевают шприц, через который периоди­чески отсысывают желудочное содержимое. Существуют разные схемы исследования желудочного содержимого фракционным способом, в настоящее время обычно применяют следующую схему.

Отсасывают все содержимое желудка после введения зонда (пор­ция натощак). Надо стремиться, чтобы время от начала введения зон­да до извлечения порции "натощак" не превышало 5 мин, т. е. длитель­ности латентного периода возбуждения желудочных желез, в против­ном случае получаемый секрет будет отражать реакцию желудочных желез на механическое раздражение зондом.

Затем в течение 1 ч отсасывают содержимое желудка каждые 15 мин (базальный секрет), аспирацию производят по 5 мин с 10-минут­ными интервалами.

Затем применяют какой-либо стимулятор желудочной секреции и собирают желудочный сок, выделяющийся на фоне активной стимуля­ции. В качестве стимуляторов применяют энтеральные и парентераль­ные раздражители. Энтеральные раздражители вводят через зонд, предложено большое количество энтеральных раздражителей: бульон­ный, капустный, алкогольный, общим их недостатком является труд­ность стандартизации. В качестве парентеральных раздражителей используют гистамин, гисталог, пентагастрин, инсулин. Аспирацию стимулированного секрета проводят также в течение 1 ч, отмечая 15— минутные порции. Таким образом, за каждый час получают по 4 порции желудочного сока (часовое напряжение желудочной секреции соответ­ствующего периода).

Для аспирации желудочного содержимого кроме шприца можно ис­пользовать установки для непрерывной вакуум-аспирации, что особен­но важно при необходимости обследовать несколько пациентов одновременно.