Как стерилизовать медизделия с применением низкотемпературных методов

Как стерилизовать медизделия с применением низкотемпературных методов

Петр Демидов, заведующий централизованной стерилизационной ГБУЗ «ГКБ № 4 ДЗМ», преподаватель ГБОУ «СПО ММК № 7», менеджер сестринского дела

Чтобы выбрать метод стерилизации для медизделий, чувствительных к высоким температурам, удобно использовать таблицу. Расскажу, как составить и использовать таблицу, какие медизделия подходят для низкотемпературной стерилизации и как правильно их подготовить к обеззараживанию.

Какие медизделия можно стерилизовать низкотемпературным методом

Низкотемпературный метод стерилизации применяют для обработки медизделий, которые не выдерживают стерилизацию паром, – МИ из пластика, цветных металлов, стекла в металлическом обрамлении:

· лапароскопическое оборудование;

· инструменты для эндоскопической хирургии;

· имплантаты – суставы, протезы сосудов, костей, клапаны сердца;

· атроскопы, биопсийные щипцы, дерматомы;

· дрель костная, присоединительные элементы для наркозно-дыхательной аппаратуры;

· цистоскопы, световоды, провода, хрусталик глаза;

· аппарат «сердце-легкие» (И.И. Корнев, 2000).

Медизделия, которые нельзя стерилизовать паровым методом, называются термолабильными. Низкотемпературная обработка не повреждает материалы, из которых сделаны термолабильные МИ.

Основной документ, определяющий выбор метода для обработки МИ многократного применения, – инструкция по эксплуатации. Согласно ГОСТ Р ИСО 17664-2012 «Информация, предоставляемая изготовителем, для проведения повторной стерилизации медицинских изделий», ответственность за выбор и валидацию определенного способа обработки для конкретного медицинского изделия несет изготовитель. Стандарт ГОСТ Р ИСО 17664-2012 устанавливает требования к информации, которую должен предоставить изготовитель медицинского изделия для обеспечения безопасной стерилизации.

При выборе оборудования и метода для стерилизации МИ медорганизации должны руководствоваться инструкциями изготовителя медицинского изделия.

Как подготовить медизделия к низкотемпературной стерилизации

Подготовьте изделия медицинского назначения для низкотемпературной стерилизации, соблюдая следующие стадии:

· подготовку на месте;

· подготовку;

· очистку;

· дезинфекцию;

· сушку;

· проверку, обследование и испытания;

· упаковывание.

Подготовка на месте включает в себя:

· закупоривание/откупоривание отверстий;

· разборку МИ;

· проверку герметичности;

· выполнение требований к технике погружения/чистке изделия щеткой;

· ультразвуковую обработку изделия.

Требования к подготовке МИ подробно описаны в инструкции по применению конкретного изделия.

При подготовке необходимо удалить все виды загрязнения с МИН, а также снизить микробную контаминацию до уровня, не превышающего уровень биоиндикатора. Для этого используйте ручную или автоматическую очистку МИ.

Отдавайте предпочтение термической очистке или дезинфекции; исключение – случаи, когда медизделия не выдерживают такой обработки. В этом случае проведите химическую дезинфекцию: в моечные машины встроены программы для обеззараживания с помощью растворов надуксусной кислоты (п. 3 ГОСТ Р ИСО 17664-2012).

Схемы ручной и механизированной очистки медизделий

Ручной способ ОСТ 42-21-2-85	Механизированный способ ГОСТ 15883-1-2011
Ополаскивание проточной водой	Ополаскивание проточной водой – 3 мин.
Замачивание в моющем растворе при полном погружении медизделия	Основная мойка – 0,5%-ный щелочной раствор, 60–70 °С, 10-15 мин.
Мойка каждого медизделия в моющем растворе при помощи ерша или ватно-марлевого тампона – 0,5 мин./изделие	Нейтрализация – 1–2 мл/л, 60 °С, 1 мин.
Ополаскивание проточной водой	Ополаскивание проточной водой
Ополаскивание дистиллированной водой	Ополаскивание дистиллированной водой
	Химическая дезинфекция
Сушка горячим воздухом	Сушка горячим воздухом

Примеры используемых методов обработки МИ

Обработка			Тип медицинского изделия
			А Многоразовый хирургический инструмент	С Эндоскопы (неустойчивые к тепловым воздействиям)	D Инструмент, используемый с эндоскопом	G Многоразовый контейнер	H Эластичные материалы <1>	I Высокочастотный кабель и наконечник	J Механизированный инструмент
Подготовка на месте эксплуатации	Вид обработки	Влажная Сухая	+ +	+ +	+ +	+ +	+ +	+ +	+ +
Деконтаминация	Подготовка	Выбирается в зависимости от процедуры дезинфекции и очистки
	Очистка	Ручная	+	+	+	+	+	+	+
		Машинная	+	+	+	+		+	+
		Ульразвуковая	+	–	+	N/A	–	+	–
		Щелочное моющее средство	+	+	+	- <2>	+	+	–
		Кислое моющее средство	–	–	–	- <2>	+	+	–
		Нейтральное моющее средство	+	+	+	+	+	+	+
	Ополаскивание <3>
	Дезинфекция	Химическая	+	+	+	+	+	+	+
		Термическая	+	-	+	+	+	+	+
	Сушка	Тмакс

<1> Термостойкая резина или латекс (или их сочетание), силикон, пластик, заполняющие полости медицинского изделия.

<2> Применяется только для алюминиевых сплавов.

<3> Рекомендуется при окончательном ополаскивании деионизированной водой.

Условные обозначения:

«+» – может применяться;

«–» – неприемлемо;

N.A. – не разрешается.

Источник: приложение А к ГОСТР ИСО 17664-2012

Перед дезинфекцией посмотрите в инструкции по применению к медизделию:

· описание вспомогательных приспособлений для дезинфекции;
время действия дезсредства;

· наименование и концентрацию химических реагентов для дезинфекции;

· указание о качестве используемой воды;

· ограничения по использованию и информацию о проверке остаточных количеств реагентов на МИ;

· ограничение по температуре, концентрации растворов, время их воздействия;
температуру дезинфекции;

· порядок процедуры, включая промывание (п. 3.6 ГОСТ ИСО 17664).

После очистки или дезинфекции проверьте, не осталось ли на МИ щелочных компонентов моющих средств и следов крови. Для определения остаточных количеств моющих средств используют фенолфталеиновую пробу, для определения следов крови – азопирамовуюпробу.

После предстерилизационной очистки упакуйте МИ в материал, совместимый с процессом стерилизации – упаковка должна быть проницаемая для физических и химических агентов, которые влияют на эффективность процесса стерилизации.

Пример: какую упаковку МИ использовать для стерилизации

Если МИ требуется специальный метод упаковывания или размещения, это должно быть указано в инструкции по применению.

Таблица методов низкотемпературной стерилизации

Метод	Плюсы	Минусы
Плазма паров пероксида водорода	Безопасно для окружающей среды. Нетоксичные продукты. Цикл занимает от 28 до 75 мин. (зависит от типа модели), не требует аэрации. Используется для влаго- и термочувствительных изделий с температурой менее 50 0С. Аппараты, применяемые для стерилизации плазмой, просты для монтажа, использования и контроля. Метод совместим с большинством медицинских изделий	Нельзя стерилизовать: целлюлозную бумагу, белье, жидкости. Размер стерилизационной камеры – от 60 до 300 л в зависимости от модели стерилизатора. Некоторые эндоскопы и медицинские изделия с длинными тонкими каналами не могут быть простерилизованы плазмой (см. рекомендации производителя). Требуется синтетическая упаковка на основе полипропилена или полиолефина или специальные контейнеры. Пероксид водорода может быть токсичным при уровне более 1ppmTWA
100%-ная окись этилена	Проникает в упаковочные материалы, каналы изделий. Использование одноразового картриджа вместе с отрицательным давлением в стерилизационной камере минимизируют риск утечки газа и воздействие окиси этилена на персонал. Метод прост для использования и контроля. Совместим с большим количеством медицинских изделий	Требуется аэрация для удаления остатков окиси этилена. Стерилизационная камера – от 126 до 263 л в зависимости от модели аппарата. Окись этилена токсична, канцерогенна и легко воспламеняема. Выделение окиси этилена в окружающую среду снижается посредством катализа с образованием СО2 и Н2О на 99,9%. Храните картриджи с окисью этилена в местах, защищенных от возгорания
Смесь газов окиси этилена	Смесь газов проникает в упаковочные материалы и пластик. Метод совместим с большим количеством медицинских изделий, прост для использования и контроля	Выделение окиси этилена в окружающую среду снижается посредством катализа с образованием СО2 и Н2О на 90–99,9%. Окись этилена токсична, канцерогенна и легко воспламеняема. Потенциально опасна для персонала и пациентов. Длинный цикл стерилизации и большое время аэрации
Формальдегид	Стерилизацию формальдегидом можно проводить в комбинированных стерилизаторах, которые работают как с паром, так и с формальдегидом. Температура стерилизации – 60–80 °С, влажность – 75–100%	Цикл стерилизации проходит при отрицательном давлении
Надуксусная кислота	Быстрый цикл стерилизации – 30–45 мин. Низкая температура стерилизации – 50–55 0С; стерилизация погружением в жидкость. Безопасные для окружающей среды конечные продукты. Стерилянт проходит через эндоскоп, удаляет соли, белки и микроорганизмы	Медизделия стерилизуют без упаковки. Невозможно проконтролировать эффективность стерилизации с помощью биологических индикаторов. Метод используется только для погружаемых инструментов; его нельзя использовать для стерилизации МИ, содержащих анодированный алюминий. За один цикл стерилизации можно обработать небольшое количество инструментов. Метод потенциально опасен для глаз и кожи при контакте с концентрированными растворами

Источник: W. Rutala, D. Weber., 2008

Внимание: надуксусная кислота не зарегистрирована в России как стерилянт. Согласно приказу Минздрава России от 10 ноября 2002 г. № 344 все дезинфицирующие и стерилизующие средства должны быть зарегистрированы соответствующим образом. Если применяете надуксусную кислоту как стерилянт и это обнаружили специалисты Роспотребнадзора, можете получить штраф от 10 до 20 тыс. руб. по статье 6.3 КоАП РФ.

Пример: как выбрать метод низкотемпературной стерилизации для МИ

Ситуация: что делать, если утерян паспорт медизделия?

Стерилизация окисью этилена

Окись этилена подходит в качестве стерилянта для термо- и влагочувствительных ИМН. Стерилизация проходит в газовых аппаратах с камерами, в которых поочередно создается вакуум и давление. Для стерилизации растворов достаточно 400–500 мг окиси этилена на 1 л при 20°; относительная влажность – 40–80 процентов, длительность экспозиции – 6 ч. Температурный режим стерилизации – 37, 42, 55 градусов по Цельсию.

Цикл стерилизации:

· предварительная обработка медицинского изделия воздухом с изменением температуры и влажности;

· газовая фаза – стерилизующий цикл, когда продукт обрабатывается газообразным оксидом этилена;

· проветривание – дегазация медицинского изделия для удаления остатков оксида этилена из медизделий.

Контролируйте стерилизацию окисью этилена с помощью химических и биологических индикаторов. Индикаторы закладывают как в камеру, так и в упаковку с медизделиями (ГОСТ Р ИСО 11140-1-2011 и ГОСТ Р ИСО 11138-2-2012).

Стерилизация формальдегидом

Формалин – водный 35–40%-ный раствор формальдегида, или муравьиного альдегида СН₂0, – обладает своеобразным раздражающим запахом. Содержит примеси муравьиной кислоты и метилового спирта, добавляемого для стабилизации раствора – предохранение от полимеризации формальдегида.

В качестве стерилянта применяются 40%-ные растворы формальдегида. Стерилизацию формальдегидом можно проводить в комбинированных стерилизаторах, которые работают как с паром, так и с формальдегидом. Температура стерилизации – 60–80 °С, влажность – 75–100 процентов. Расход на 1 цикл – 300 и 400 мл (стерилизаторы объемом 450 и 580 л). Цикл формальдегидной стерилизации проходит от 1,5 до 3,5 часа.

Цикл формальдегидной стерилизации происходит при отрицательном давлении, что снижает риск воздействия формальдегида на персонал, однако при недостаточно эффективной работе систем приточно-вытяжной вентиляции возможно появление запаха формальдегида на этапе сброса реагента из камеры.

Контроль эффективности стерилизации осуществляется химическими и биологическими индикаторами (ГОСТ Р ИСО 11140-1-2011, ГОСТ Р ИСО 25424-2013 и ГОСТ Р ИСО 18472-2009).

См. также

· Как выбрать дезинфицирующее средство

· Какие требования предъявляют к предстерилизационной обработке изделий медицинского назначения

· Микробиологический мониторинг

Шаблоны

· Памятка: правила работы со стерильными инструментами и материалами

 

«Как стерилизовать медизделия с применением низкотемпературных методов». П.А. Демидов
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/16/37982/bssPhr1/?of=copy-a6d8a0fedb

 

См. также

· Как организовать внутренний контроль за стерилизацией

· Как разместить и оборудовать центральное стерилизационное отделение

· Как стерилизовать медизделия с применением низкотемпературных методов

Шаблоны

· Памятка: правила работы со стерильными инструментами и материалами

· Требование на стерилизацию

 

«Как сдавать инструменты на стерилизацию и получать их обратно». П.А. Демидов
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/16/38330/bssPhr1/?of=copy-c2a945a543

 

 

Характеристика

Стерилизующий агент

Формальдегид Этиленоксид Пероксид водорода Действующие вещества Газовая смесь в 2-процентном растворе паров формальдегида 100-процентный этиленоксид Газовая смесь в камере с 55-56-процентным или 90-процентным пероксидом водорода

Химические свойства агента

Класс опасности 2, канцероген Класс опасности 2, канцероген, мутаген Класс опасности 3 Обладает раздражающим действием Отсутствует раздражающее действие Обладает раздражающим действием Средняя проникающая способность Высокая проникающая способность Чувствителен к органическим загрязнителям Оборудование Matachana 130 LF STERI-VAC STERRAD Область применения Жесткие и гибкие эндоскопы, микрохирургические инструменты, катетеры, проводники, клапаны, чехлы, футляры, сенсоры, имплантаты Кроме изделий из ПВХ и плексигласа Эндоскопы, в том числе видеоэндоскопы и гибкие одноканальные, инструменты к ним, хирургические инструменты, кардиостимуляторы, датчики, наркозо-дыхательная аппаратура Цикл стерилизации Температура от 70 до 80 °C, время стерилизации – 2–4 часа Температура от 37 °С до 55 °С, время стерилизации – 3–5 часов, время аэрации от 8 до 12 часов Температура от 45 °С до 55 °С, время – 72 минуты Упаковочные материалы Все виды упаковочных материалов Все виды упаковочных материалов Специальный нетканый материал, который не содержит целлюлозу Стандартизация процесса Нестандартизован, биологические индикаторы контроля отсутствуют Стандартизован, есть химические и биологические индикаторы контроля Стандартизован, есть химические и биологические индикаторы контроля, биологические тесты Ограничения Конструкция стерилизатора должна исключать прямой контакт персонала с формальдегидом и его парами Устанавливают оборудование в специальном помещении Габариты оборудования и стерилизационной камеры должны соответствовать эндоскопам

 

 

«Особенности методов низкотемпературной стерилизации эндоскопов»
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/117/36893/dfasd8pfna/?of=copy-5088379b46

 

Таблица 1. Температура паровоздушной среды по Адаму

Избыточное давление (в атмосферах, Р)	0,4	0,6	1,0	2,1	Доля воздуха (процентов)
Температура (в градусах Цельсия)	72	90	100	121	50%
	96	105	112	128	25%
	109	115	121	135	0%

Для качественной стерилизации – SAL = 10^-6 – необходимо, чтобы пар не был слишком сухим или слишком влажным. Сухость и насыщенность пара определите по соотношению значений давления и температуры пара в стерилизационной камере. Смотрите их в таблице 2.

Таблица 2. Показатели давления и температуры пара

Давление пара, атм	Температура пара, °С
0,0	99,1
0,5	110,8
1,0	119,6
1,1	121,2
1,5	126,8
2,0	132,9
2,1	134,0

Если температура пара при стерилизации и заданном давлении меньше приведенной в таблице, пар влажный. Он увлажняет медизделие при стерилизации и снижает качество обработки.

Если температура пара превышает значения из таблицы, то пар перегрет и по своим свойствам близок к сухому горячему воздуху. В этом случае качество стерилизации тоже снижается.

Давление пара в гравитационных стерилизаторах измеряйте термометром обычным и максимальным, который позволяет проверить температуру в разных точках камеры и внутри упаковок с медизделиями. Температуру пара измеряйте мановакуумметром.

Внимание: в гравитационных стерилизаторах с ручным управлением нет термометра, поэтому режим стерилизации устанавливают по давлению пара. Это может приводить к ошибкам в процессе цикла стерилизации, а медизделия в 12 процентах случаев оказываются нестерильными.

Как подобрать форвакуумный стерилизатор

На качество стерилизации в форвакуумных стерилизаторах влияют герметичность камеры и системы трубопроводов, глубина разрежения при предварительном удалении воздуха из стерилизационной камеры, разность давлений в фазе пульсирующей откачки и длительность вакуумных фаз. Режим стерилизации в форвакуумных стерилизаторах короткий, так как скорость прогрева медизделия высокая. Смотрите, какие температура и время соответствуют разным режимам, в таблице 3.

Таблица 3. Режим работы форвакуумных стерилизаторов

Режим работы	Температура, °C	Время, мин
1	121	20
2	134	5

Когда выбираете форвакуумный стерилизатор, соберите отзывы коллег из других медорганизаций о конкретной модели аппарата – долго ли камера и трубопроводы сохраняют герметичность, полностью ли удаляется воздух из камеры.

Чтобы убедиться, что стерилизатор работает правильно, перед началом работы проверяйте стерилизационную камеру и тестируйте ее на герметичность. Методика проверки камеры описана в руководстве по эксплуатации.

В современных моделях стерилизаторов есть программа вакуумного тестирования – с ее помощью аппарат самостоятельно определяет степень герметичности камеры.

Как проверить стерилизатор

Убедитесь, что на наружных и внутренних поверхностях нет трещин

Перед началом работы на паровом стерилизаторе проверьте наружные поверхности парообразователя, стерилизационной камеры, трубопроводов, корпуса аппарата, водомерное стекло. Убедитесь, что нет трещин и изъянов. Осмотрите индикаторные лампочки манометра – они должны показывать нормальный уровень давления.

Проверьте заземление корпуса стерилизатора и предохранительный клапан. Один раз в несколько месяцев контролируйте работоспособность клапана так, как написано в инструкции по эксплуатации к стерилизатору. Правила эксплуатации и обслуживания парового стерилизатора утверждены приказом Минздрава СССР от 10 октября 1991 г. № 287.

Пример: как проверить работоспособность предохранительного клапана

Таблица 4. Периодичность контроля

Вид исследования	Объект исследования	Периодичность исследования
Физический, вакуум-тест	герметичность камеры	ежедневно перед началом работы на холодной камере
Химический, Бови-Дик тест или Тест-ИХ	полнота удаления воздуха из камеры	не реже одного раза в неделю
Микробиологический, метод посева с образцов простерилизованных изделий	стерильность	еженедельно
Микробиологический, биологические индикаторы	эффективность работы стерилизатора	один раз в месяц

Ситуация: что делать старшей медсестре, если в одном из микробиологических тестов обнаружен рост культуры микроорганизмов

Таблица 5. Методы низкотемпературной стерилизации

Метод	Плюсы	Минусы
Плазма паров пероксида водорода	Безопасно для окружающей среды. Нетоксичные продукты. Цикл занимает от 28 до 75 мин. (зависит от типа модели), не требует аэрации. Используется для влаго- и термочувствительных изделий с температурой менее 50 0С. Аппараты, применяемые для стерилизации плазмой, просты для монтажа, использования и контроля. Метод совместим с большинством медицинских изделий	Нельзя стерилизовать: целлюлозную бумагу, белье, жидкости. Размер стерилизационной камеры – от 60 до 300 л в зависимости от модели стерилизатора. Некоторые эндоскопы и медицинские изделия с длинными тонкими каналами не могут быть простерилизованы плазмой (см. рекомендации производителя). Требуется синтетическая упаковка на основе полипропилена или полиолефина или специальные контейнеры. Пероксид водорода может быть токсичным при уровне более 1ppmTWA
100%-ная окись этилена	Проникает в упаковочные материалы, каналы изделий. Использование одноразового картриджа вместе с отрицательным давлением в стерилизационной камере минимизируют риск утечки газа и воздействие окиси этилена на персонал. Метод прост для использования и контроля. Совместим с большим количеством медицинских изделий	Требуется аэрация для удаления остатков окиси этилена. Стерилизационная камера – от 126 до 263 л в зависимости от модели аппарата. Окись этилена токсична, канцерогенна и легко воспламеняема. Выделение окиси этилена в окружающую среду снижается посредством катализа с образованием СО2 и Н2О на 99,9%. Храните картриджи с окисью этилена в местах, защищенных от возгорания
Смесь газов окиси этилена	Смесь газов проникает в упаковочные материалы и пластик. Метод совместим с большим количеством медицинских изделий, прост для использования и контроля	Выделение окиси этилена в окружающую среду снижается посредством катализа с образованием СО2 и Н2О на 90–99,9%. Окись этилена токсична, канцерогенна и легко воспламеняема. Потенциально опасна для персонала и пациентов. Длинный цикл стерилизации и большое время аэрации
Формальдегид	Стерилизацию формальдегидом можно проводить в комбинированных стерилизаторах, которые работают как с паром, так и с формальдегидом. Температура стерилизации – 60–80 °С, влажность – 75–100%	Цикл стерилизации проходит при отрицательном давлении
Надуксусная кислота	Быстрый цикл стерилизации – 30–45 мин. Низкая температура стерилизации – 50–55 0С; стерилизация погружением в жидкость. Безопасные для окружающей среды конечные продукты. Стерилизационный агент проходит через эндоскоп, удаляет соли, белки и микроорганизмы	Медизделия стерилизуют без упаковки. Невозможно проконтролировать эффективность стерилизации с помощью биологических индикаторов. Метод используется только для погружаемых инструментов; его нельзя использовать для стерилизации МИ, содержащих анодированный алюминий. За один цикл стерилизации можно обработать небольшое количество инструментов. Метод потенциально опасен для глаз и кожи при контакте с концентрированными растворами

Источник: W. Rutala, D. Weber., 2008

Внимание: надуксусная кислота не зарегистрирована в России как стерилизационный агент. Согласно приказу Минздрава России от 10 ноября 2002 г. № 344 все дезинфицирующие и стерилизующие средства должны быть зарегистрированы соответствующим образом. Если применяете надуксусную кислоту и это обнаружат специалисты Роспотребнадзора, можете получить штраф от 10 до 20 тыс. руб. по статье 6.3 КоАП РФ.

Пример: как выбрать метод низкотемпературной стерилизации для МИ

Стерилизация окисью этилена

Окись этилена подходит в качестве стерилизационного агента для термо- и влагочувствительных медизделий. Стерилизация проходит в газовых аппаратах с камерами, в которых поочередно создается вакуум и давление. Для стерилизации растворов достаточно 400–500 мг окиси этилена на 1 л при 20 °С; относительная влажность – 40–80 процентов, длительность экспозиции – 6 ч. Температурный режим стерилизации – 37, 42, 55 °С.

Цикл стерилизации включает в себя предварительную обработку, стерилизующий цикл и проветривание. Контролируйте стерилизацию окисью этилена с помощью химических и биологических индикаторов. Индикаторы закладывайте в камеру и в упаковку с медизделиями (ГОСТ Р ИСО 11140-1-2011 и ГОСТ Р ИСО 11138-2-2012).

Стерилизация формальдегидом

В качестве стерилизационного агента применяются 40% растворы формальдегида. Стерилизацию формальдегидом можно проводить в комбинированных стерилизаторах, которые работают как с паром, так и с формальдегидом. Температура стерилизации – 60-80 °С, влажность – 75-100 процентов. Расход на 1 цикл – 300 и 400 мл для стерилизаторов объемом 450 и 580 л соответственно. Цикл формальдегидной стерилизации длится от 1,5 до 3,5 часа.

Контроль эффективности стерилизации осуществляется химическими и биологическими индикаторами согласно ГОСТ Р ИСО 11140-1-2011, ГОСТ Р ИСО 25424-2013 и ГОСТ Р ИСО 18472-2009.

См. также

· Как выбрать паровой стерилизатор

Шаблоны

· Должностная инструкция медицинской сестры стерилизационной

· Инструкция по работе с паровыми стерилизаторами

· Приказ об организации надзора и обеспечении безопасной эксплуатации стерилизаторов медицинских паровых

 

«Все о паровых и низкотемпературных методах стерилизации». С.М. Савенко, П.А. Демидов
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/16/40319/bssPhr1/?of=copy-ecb85e917b

 

См. также

· Как контролировать качество стерилизации медизделий

· Как организовать внутренний контроль за стерилизацией

· Как стерилизовать медизделия паровым методом

· Как стерилизовать медизделия с применением низкотемпературных методов

Шаблоны

· Журнал контроля работы стерилизаторов воздушного, парового (автоклава), форма № 257/у

 

«Как контролировать стерилизацию». П.А. Демидов
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/16/38058/bssPhr1/?of=copy-2f92eda655

 

См. также

· Как выбрать паровой стерилизатор

· Как обеспечить медорганизацию стерильными материалами без центрального стерилизационного отделения

· Как стерилизовать медизделия паровым методом

· Как стерилизовать медизделия с применением низкотемпературных методов

· Микробиологический мониторинг

Шаблоны

· Алгоритм: постановка азопирамовой, амидопириновой и фенолфталеиновой проб

· Инструкция по работе с паровыми стерилизаторами

· Памятка: правила работы со стерильными инструментами и материалами

· Правила подготовки стерилизующих коробок (биксов) к стерилизации

· Рабочий журнал исследований на стерильность

Справочники

· Методы стерилизации и факторы влияния

 

«Как организовать внутренний контроль за стерилизацией». С.М. Савенко
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/16/38003/bssPhr1/?of=copy-7688ea180f

 

Классификация по Сполдингу

Сполдинг разделил медизделия по риску заражения больничной флорой на три группы. Первая группа – критические, их обязательно надо стерилизовать. К ним относятся хирургические инструменты, катетеры, имплантаты, иглы и жидкости для инъекций. Вторая группа – полукритические, их подвергают дезинфекции высокого уровня: эндоскопическое и ингаляционное оборудование, приборы для анестезии, ректальные термометры. Третья группа – некритические, их следует только подвергать дезинфекции среднего и низкого уровня. К ней относятся все остальные предметы: судна, тонометры, костыли, посуда, белье, подмышечные термометры.

Наименование работ

Работу выполняет

Главная медсестра Старшая медсестра отделения Оператор стерилизаторов Медсестра кабинета Проверка работы старшей медсестры по выполнению мероприятий, направленных на повышение надежности паровой стерилизации +       Проверка работы медсестры по выполнению мероприятий, направленных на повышение надежности паровой стерилизации   +     Проверка работы оператора стерилизаторов по выполнению мероприятий, направленных на повышение надежности паровой стерилизации   +     Проверка герметичности камеры парового стерилизатора +   +   Проверка точности автоматической программы проверки камеры на герметичность +       Проверка полноты удаления воздуха из стерилизуемых изделий +   +   Проверка точности показаний штатных электротермометров, мановакуумметров паровых стерилизаторов +       Определение эффективности сушки простерилизованных изделий + +     Проверка эффективности паровой стерилизации с применением тестов со спорами B.Stearothermophilus + +     Контроль температуры и давления по контрольно-измерительным приборам     +   Проверка наличия на каждой стерилизационной упаковке цветного индикатора стерилизации и изменения цвета после стерилизации +   + + Проверка пригодности к использованию стерилизационной упаковки – исправность стерилизационных коробок, наличие и своевременность смены фильтров в них, целостность мягких упаковочных материалов     + +

См. также

· Как дезинфицировать медицинские изделия

· Как проводить предстерилизационную очистку медизделий

· Как стерилизовать медизделия паровым методом

· Как стерилизовать медизделия с применением низкотемпературных методов

Шаблоны

· Алгоритм: постановка азопирамовой, амидопириновой и фенолфталеиновой проб

· Памятка: правила работы со стерильными инструментами и материалами

Справочники

· Методы стерилизации и факторы влияния

 

«Как обеспечить медорганизацию стерильными материалами без центрального стерилизационного отделения». П.А. Демидов
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/16/37995/bssPhr1/?of=copy-c8d2acf245

 

 

Рекомендации

· Как организовать внутренний контроль за стерилизацией

 

«Методы стерилизации и факторы влияния»
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/117/21617/bssPhr1/?of=copy-2aaa358abb

 

Меры безопасности

Персонал, который очищает изделия вручную, может заразиться ВИЧ и парентеральным гепатитом. Также есть риск развития профессиональных заболеваний (аллергия, дерматиты и др.). Поэтому сотрудники обязаны соблюдать правила работы с химическими веществами и меры эпидемиологической предосторожности:

· использовать средства защиты, например водонепроницаемый фартук, очки, маску, нитриловые одноразовые перчатки или армированные для мытья колюще-режущих инструментов;

· планировать свои действия при работе с травмоопасными инструментами;

· мыть изделия и инструменты в толще рабочего раствора и не допускать разбрызгивания;

· дезинфицировать емкости и технические приспособления по окончании предстерилизационной очистки;

· собирать и обеззараживать использованные одноразовые материалы и изделия как отходы класса Б;

· обрабатывать руки кожными антисептиками после того, как снимут перчатки, и каждый раз после контакта с кровью, биологическими жидкостями, секретами, выделениями или потенциально контаминированными предметами и оборудованием;

· использовать для обработки рук раковины для мытья рук;

· сообщать администрации о травматизме при работе с иглами, другими острыми предметами, инфицированными субстратами;

· иметь прививку от гепатита В.

Руководитель подразделения обязан инструктировать и обучать сотрудников правилам профилактики инфекций. Нужно показать, как работать с травмоопасными и инфекционными субстратами, а также обезвреживать и утилизировать их.

См. также

· Как готовить и хранить рабочие растворы дезинфицирующих средств

· Как обеспечить биологическую безопасность производственной среды в клинико-диагностических лабораториях

Шаблоны

· Журнал учета качества предстерилизационной обработки

Справочники

· Этапы предстерилизационной очистки в зависимости от способа ПСО

 

«Как проводить предстерилизационную очистку медизделий». Грачева Г.В., С.М. Савенко
© Материал из Справочной системы «Главная медсестра».
Подробнее: https://vip.1glms.ru/#/document/16/37595/bssPh